Información de la revista
Compartir
Compartir
Descargar PDF
Más opciones de artículo
Visitas
797
Revisión
Acceso a texto completo
Disponible online el 21 de octubre de 2024
Estudio genético en adultos con glomeruloesclerosis focal y segmentaria
Indications for genetic testing in adults with focal segmental glomerulosclerosis
Visitas
797
Melissa Pilco-Terána,1, Amir Shabakab,1, Mónica Furlanoa, Ana Tato Riberac, Isabel Galán Carrillod, Eduardo Gutiérreze, Roser Torraa, Gema Fernández-Juárezb,
Autor para correspondencia
gema.fernandezjuarez@salud.madrid.org

Autor para correspondencia.
, en representación del Grupo de Trabajo de Enfermedades Renales Hereditarias (GTERH) y Grupo de Trabajo de Enfermedades Glomerulares de la Sociedad Española de Nefrología (GLOSEN)
a Unidad de enfermedades renales hereditarias, Servicio de Nefrología, Fundació Puigvert. Instituto de investigación biomédica Hospital de Sant Pau. Universidad Autónoma de Barcelona, escuela de Medicina, Barcelona, España
b Servicio de Nefrología, Hospital Universitario La Paz, Madrid, España
c Servicio de Nefrología, Hospital Universitario Fundación Alcorcón, Madrid, España
d Servicio de Nefrología, Hospital General Universitario Morales Meseguer, Murcia, España
e Servicio de Nefrología, Hospital Universitario 12 de Octubre, Madrid, España
Este artículo ha recibido
Información del artículo
Resumen
Texto completo
Bibliografía
Descargar PDF
Estadísticas
Figuras (1)
Tablas (2)
Tabla 1. Genes asociados a glomeruloesclerosis focal y segmentaria y sus características clínicas
Tabla 2. Indicaciones de estudio genético en adultos con glomeruloesclerosis focal y segmentaria
Mostrar másMostrar menos
Resumen

La glomeruloesclerosis focal y segmentaria (GEFS) es un patrón histológico de lesión que deriva de diversos procesos patológicos que afectan a los podocitos, resultando en pérdida de selectividad del filtrado glomerular, proteinuria y desarrollando insuficiencia renal que progresa a enfermedad renal crónica terminal en un importante número de pacientes. La clasificación propuesta por las guías KDIGO, en 2021, divide la GEFS en cuatro categorías: primaria, secundaria, genética y de causa no determinada, facilitando así su diagnóstico y manejo. Las causas hereditarias de la GEFS presentan una variabilidad clínica significativa, complicando su identificación. El estudio genético es crucial para identificar la GEFS de causa genética. La prevalencia de la GEFS genética es significativa en niños y considerable en adultos, destacando la importancia del diagnóstico temprano para evitar tratamientos innecesarios y facilitar el consejo genético. Las técnicas de secuenciación masiva han revolucionado el diagnóstico genético, permitiendo la identificación de más de 60 genes responsables del daño podocitario. Este documento propone recomendaciones clínicas y patológicas para la realización de estudios genéticos en adultos con GEFS, subrayando la necesidad de una correcta clasificación para la planificación terapéutica adecuada y la mejora de los resultados en ensayos clínicos.

Palabras clave:
Genética
Glomeruloesclerosis focal y segmentaria
Indicaciones
Abstract

Focal segmental glomerulosclerosis (FSGS) is a histological pattern of injury that derives from various pathological processes that affect podocytes, resulting in loss of selectivity of the glomerular filtration membrane, proteinuria and the development of renal failure that progresses to end-stage kidney disease in a significant number of patients. The classification proposed by the 2021 KDIGO guidelines divides FSGS into four categories: primary, secondary, genetic, and FSGS of undetermined cause, thus facilitating its diagnosis and management. Genetic causes of FSGS present significant clinical variability, complicating their identification. Genetic testing is crucial to identify FSGS of genetic cause. The prevalence of genetic FSGS is significant in children and considerable in adults, highlighting the importance of early diagnosis to avoid unnecessary treatments and facilitate genetic counselling. Massive sequencing techniques have revolutionized genetic diagnosis, allowing the identification of more than 60 genes responsible for podocyte damage. This document proposes clinical recommendations for carrying out genetic studies in adults with FSGS, highlighting the need for a correct classification for adequate therapeutic planning and improvement of results in clinical trials.

Keywords:
Genetic
Focal Segmental Glomerulosclerosis
Indications
Texto completo
Introducción

Se debe entender la glomeruloesclerosis focal y segmentaria (GEFS) como un patrón histológico, no como una enfermedad. Este patrón histológico es el resultado de una variedad de procesos patológicos que comparten un daño común sobre los podocitos; supone la pérdida de la selectividad del filtrado glomerular y clínicamente se traduce en la aparición de proteinuria e insuficiencia renal a largo plazo1. Histológicamente, la pérdida podocitaria supone la migración de células epiteliales de la cápsula de Bowman para intentar sustituir a los podocitos; sin embargo, este intento de regeneración es ineficiente y produce esclerosis mesangial parcheada del penacho glomerular (segmentaria) que comienza en algunos glomérulos pero no en todos (focal)2. Las guías KDIGO (Kidney Disease: Improving Global Outcomes) para el manejo de las enfermedades glomerulares, publicadas en 2021, proponen una nueva clasificación, etiopatogénica y dividida en cuatro categorías, lo que facilita el diagnóstico y abordaje terapéutico. Así, tenemos formas primarias, secundarias, genéticas o de causa no determinada3. Los antecedentes familiares, personales y la forma de presentación clínica no siempre son suficientes para excluir una causa hereditaria. La presentación clínica de las GEFS de causa genética es extremadamente variable; con diferencias en la edad de debut, grado de proteinuria y la forma de progresión de la enfermedad renal crónica (ERC). Inicialmente, las formas genéticas fueron descritas con un comienzo en la edad infantil, asociadas principalmente a síndrome nefrótico resistente a corticoides; sin embargo, en función de los criterios de selección, hasta un 30% de los casos de GEFS en adultos puede estar asociado a una causa genética4–8, por lo que sigue siendo un reto definir los criterios para realizar estudio genético. Las características clínicas e histológicas que parecen predecir mejor la etiología genética son: la ausencia de respuesta a las terapias inmunosupresoras, la presencia de microhematuria, la ausencia de fusión pedicelar difusa en la biopsia renal y mantener una albúmina sérica normal a pesar de desarrollar una proteinuria en rango nefrótico6,9,10, aunque estas últimas dos características pueden modificarse según el momento del diagnóstico.

Está bien establecido que reconocer el diagnóstico de la GEFS de causa genética es de vital importancia para los pacientes. Por una parte, el diagnóstico precoz evita exploraciones y exposición a tratamiento inmunosupresor innecesario y permite, además, el diagnóstico de portadores asintomáticos; despistaje de patologías asociadas y facilita el consejo genético. A diferencia de las formas primarias de la GEFS, su recidiva de causa genética en el trasplante renal no es un problema; pero sí es relevante en el desarrollo de otras patologías, como anticuerpos anti-membrana basal glomerular, que ocurre en el 2-3% de los pacientes portadores de un trasplante renal con síndrome de Alport ligado al cromosoma X11. Finalmente, también permite realizar una selección adecuada de potenciales donantes renales vivos emparentados.

Una correcta clasificación de los pacientes según sus características clínicas e histológicas es fundamental para la toma de decisiones y la planificación de un adecuado esquema terapéutico. Desafortunadamente, muchos ensayos clínicos han fracasado por incluir pacientes con distintas formas de GEFS sin una correcta estratificación.

En el presente documento proponemos unas recomendaciones basadas en criterios clínicos y anatomopatológicos para la realización de estudio genético en pacientes adultos con GEFS.

Glomeruloesclerosis focal y segmentaria primaria

La etiología de la GEFS de causa inmunológica, clásicamente llamada «GEFS primaria», aún no está del todo aclarada. En las últimas décadas se ha supuesto que es causada por un factor de permeabilidad circulante, que se especula que consiste en un grupo de citoquinas que alteran de forma brusca la función podocitaria, aumentando la permeabilidad de la membrana de filtración glomerular. Este grupo de citoquinas aún no ha sido definido, y existen varias moléculas que se han propuesto como posibles causantes de la enfermedad, entre las que se incluyen el factor 1 de citoquina similar a cardiotrofina (CLCF-1), el receptor soluble del activador de plasminógeno tipo uroquinasa (suPAR), el anticuerpo anti-CD40, la apolipoproteina A1 y la forma soluble de proteína quinasa calcio/calmodulina-serina (CASK)12. En los últimos años se ha identificado que una proporción de pacientes con enfermedad de cambios mínimos son causados por los anticuerpos antinefrina13, y en trabajos posteriores se ha confirmado su papel en la GEFS primaria, especialmente en las formas recidivantes tras el trasplante14. Sin embargo, recientemente se ha identificado que solamente un 9% de los pacientes con GEFS primarias son causadas por estos anticuerpos15, por lo que queda por esclarecer cuáles son los agentes implicados en ese factor de permeabilidad que contribuye al resto de casos de GEFS.

La GEFS primaria se presenta de forma brusca y en forma de síndrome nefrótico completo (proteinuria ≥3,5g/día, hipoalbuminemia, hipercolesterolemia y edema). Histológicamente en el microscopio óptico no existen características específicas que la distingan de las otras formas de GEFS, mientras que en el microscopio electrónico destaca la presencia de una fusión pedicelar difusa que ocupa más del 80% de la superficie de la membrana glomerular y la diferencia de las formas secundarias, siendo un hallazgo determinante. En una serie de pacientes adultos y predominantemente blancos con GEFS primaria, la mediana de fusión pedicelar fue del 100%16; sin embargo, hay que tener en cuenta que varias formas hereditarias de GEFS pueden presentar también una fusión pedicelar difusa. Un análisis morfométrico del ancho de los pedicelos, que excluyó a los pacientes con formas hereditarias de GEFS, encontró pedicelos más amplios en pacientes con GEFS primaria en comparación con aquellos con GEFS secundaria. Una anchura pedicelar >1.500nm diferenciaba adecuadamente la GEFS primaria de la secundaria17. Hallazgos histológicos, como la vacuolización de los podocitos y la transformación microvellositaria, están relacionados con la cuantía de la proteinuria y, aunque inespecífico, es más frecuente visualizarlo en las formas primarias que en las secundarias18.

El tratamiento de la GEFS primaria es la inmunosupresión, y debido a su mal pronóstico en ausencia de tratamiento se recomienda iniciar precozmente la terapia inmunosupresora en casos de GEFS que debutan como síndrome nefrótico completo19.

El tratamiento con glucocorticoides es la piedra angular actual del manejo de la GEFS primaria3; Sin embargo, esta recomendación se basa en estudios observacionales y no existen estudios que hayan comparado la prednisona con placebo en el tratamiento de la GEFS primaria20. Un pequeño ensayo clínico observó que la asociación de micofenolato a dosis más bajas de esteroides conseguía resultados similares con una dosis acumulada de esteroides menor21.

La respuesta a la terapia con corticoides es una característica definitoria de la GEFS primaria, que descartaría otras causas de GEFS, aunque en ocasiones la definición de la resistencia a glucocorticoides es difícil. Estudios recientes han llegado a demostrar una variante genética en hasta un 42% de los pacientes con resistencia a glucocorticoides22, por lo que la realización de un estudio genético estaría especialmente justificada en este grupo de pacientes para evitar el tratamiento innecesario con inmunosupresores.

Los inhibidores de la calcineurina (ICN) son el tratamiento estándar para pacientes con contraindicaciones, intolerancia o resistencia a los glucocorticoides3. El mecanismo de acción de los glucocorticoides y los ICN en la GEFS primaria no está del todo claro; se presupone que estas terapias interfieren con los sitios celulares en los que se producen los supuestos factores de permeabilidad. Sin embargo, la información es un tanto ambigua sobre si el beneficio de los inmunosupresores depende únicamente de su efecto inmunosupresor o si se debe a un efecto local sobre la función de los podocitos y la estabilización de la sinaptopodina23. Las diferentes series han descrito una tasa de respuesta a glucocorticoides y/o ICN en la GEFS en el 40-70% de los casos19, aunque esta proporción probablemente esté infraestimada debido a la inclusión de pacientes con formas secundarias o hereditarias dentro de estos estudios y probablemente la tasa de respuesta a terapia inmunosupresora adecuado sea mayor en pacientes correctamente clasificados como GEFS primaria.

Una vez descartadas las causas genéticas y secundarias, la tasa de recurrencia de la GEFS primaria en el trasplante renal es de hasta un 80% en primeros trasplantes24. La recurrencia precoz en el trasplante es el sello distintivo de la GEFS primaria. No se conoce aún cual es el mejor tratamiento para la GEFS recurrente en el trasplante. La plasmaféresis profiláctica no reduce el riesgo de recurrencia, aunque la plasmaféresis terapéutica se considera como una buena opción de primera línea como terapia para eliminar los factores de permeabilidad, especialmente en recurrencias muy tempranas con proteinuria severa25. El tratamiento profiláctico con rituximab no ha demostrado ser eficaz para reducir el riesgo de recurrencia26.

Glomeruloesclerosis segmentaria y focal secundaria

La mayoría de las formas secundarias de GEFS son debidas a una mala adaptación entre la carga y la capacidad glomerular. El mecanismo patogénico es siempre común y consiste con el daño y pérdida podocitaria adaptativa secundaria al incremento de la demanda sobre los mismos (incapacidad para adaptarse al tamaño glomerular, isquemia debida a hipoperfusión). Esto puede ocurrir por circunstancias que reducen la masa renal, como la baja masa nefronal al nacer, la nefropatía por reflujo, la displasia renal o situaciones en la que existe un aumento en la tasa de filtración glomerular que sobrepasa la capacidad glomerular, como en la obesidad, la ingesta elevada de proteínas o el abuso de andrógenos27–29. Cualquier enfermedad glomerular o tubular crónica puede reducir la función total de la nefrona y provocar una GEFS maladaptativa que se superpone al trastorno primario30.

La hiperfiltración y la hipertensión en el capilar glomerular representan el mayor mecanismo de tensión sobre el podocito. Los podocitos son extremadamente sensibles al «shear stress» generado por el incremento de la presión de filtración a través de las hendiduras y sobre su superficie apical31,32.

La GEFS maladaptativa surge de los procesos descritos anteriormente, que implican un aumento de la tasa de filtración glomerular de cada nefrona, lo que lleva a un círculo vicioso de hipertrofia glomerular, hipertrofia podocitaria, estrés podocitario y su depleción con la eventual formación de sinequias y un exceso de deposición de matriz extracelular dentro del glomérulo31,33.

Las infecciones virales pueden inducir GEFS secundaria, ya sea por infección directa o por liberación de citoquinas inflamatorias que interactúan con los receptores de los podocitos. El VIH (virus de la inmunodeficiencia humana), parvovirus B-19, citomegalovirus, virus de Epstein-Barr, coronavirus-2 asociado a síndrome respiratorio agudo grave (SARS-CoV-2) o el virus del simio 40 (SV40) son algunos ejemplos de infecciones virales que pueden inducir estas lesiones1,34,35.

Existen algunos fármacos que pueden inducir GEFS, como el interferón -α, -β, o –γ, los bisfosfonatos intravenosos, las antraciclinas, el litio o los inhibidores de mTOR (mammalian target of rapamycin). Estas lesiones suelen ser reversibles una vez suspendido el tratamiento28,35.

No existe un patrón histológico típico en la GEFS secundaria, pero la glomerulomegalia es característica de aquellas formas adaptativas, la variante perihiliar (clasificación de Columbia) también suele ser característica en esta forma de GEFS en la que las sinequias están presentes predominantemente a nivel perihiliar35. Las formas colapsantes son más habituales en casos secundarios a VIH o fármacos como los bisfosfonatos. En cambio, en todas las formas de GEFS secundaria la fusión pedicelar es parcheada, ocupando generalmente <40% de la superficie glomerular. La presencia de fusión pedicelar difusa elimina el mecanismo de maladaptación como causa de GEFS primaria18,35.

La característica bioquímica que distingue a las formas secundarias es la presencia de albúmina sérica normal, a diferencia de la GEFS primaria que debuta con síndrome nefrótico. La presentación temporal de las manifestaciones clínicas puede tener también gran importancia para distinguir entre formas primarias y secundarias. Las formas primarias se suelen manifestar con un síndrome nefrótico de instauración brusca, mientras que las formas secundarias, en concreto las maladaptativas, a menudo cursan con proteinuria progresiva. Estas formas no responden a la terapia inmunosupresora y el tratamiento se debe dirigir, en la medida de lo posible, a resolver la causa subyacente. El manejo se basa en medidas que disminuyen la hiperfiltración glomerular, la retirada del fármaco causante o el tratamiento de la infección causante. Lograr una respuesta completa después del tratamiento con bloqueo del sistema renina-angiotensina (BSRAA), inhibidores del cotransportador sodio-glucosa tipo 2 (iSGLT2)36 o tratamiento de la causa subyacente, como la pérdida de peso en pacientes con obesidad, apoyaría el diagnóstico de GEFS secundaria18,37. Recientemente se ha publicado un ensayo clínico en pacientes con GEFS en los que el tratamiento con sparsertan (bloqueante dual de la endotelina tipo A y de la angiotensina II) redujo significativamente la proteinuria, sin que este efecto se tradujera en retrasar la progresión renal38. Aunque este estudio fue diseñado para analizar el efecto del sparsentan en pacientes con GEFS presuntamente primaria, el hecho de que la mediana de la proteinuria de los pacientes incluidos fue de rango subnefrótico (cociente proteínas-creatinina en orina de 3,1g/g) con una albúmina sérica media normal (3,49g/dl), indica que una amplia proporción de los pacientes estudiados no tenían GEFS primarias, sino que más bien se trataba de formas secundarias o hereditarias de GEFS, por lo tanto indicando su utilidad como antiproteinúrico en el manejo de dichos pacientes.

Glomeruloesclerosis segmentaria y focal secundaria de causa genética

La GEFS de causa genética o hereditaria es la menos frecuente, o quizás la menos diagnosticada. En los algoritmos actuales, el estudio genético no está establecido como parte del estudio inicial, por lo que en este documento queremos enfatizar que existen pacientes adultos en los cuales un estudio genético estaría indicado como primera evaluación ante la sospecha de GEFS, al igual que la biopsia renal.

Las técnicas de secuenciación masiva han permitido identificar más de 60 genes responsables de daño podocitario. Los genes que codifican proteínas localizadas en el podocito, diafragma de hendidura y la membrana basal glomerular son los principales implicados en la GEFS de causa genética, siendo los más frecuentes los genes del colágeno tipo IV, seguido de los genes relacionados con podocitopatías (ACTN4, INF2, NPHS1, NPHS2, TRPC6, LMXB1)8,39–41. Una de las indicaciones para realizar estudio genético en pacientes adultos es la no respuesta a inmunosupresión, aunque existen algunos casos de GEFS genética que podrían responder a corticoides (EMP2 o PLCG2)39 y algunas formas también son respondedoras a ICN (NPHS1, NPHS2, TRPC6, WT1) debido a un efecto local sobre la función de los podocitos y la estabilización de la sinaptopodina23, induciendo una reducción en la proteinuria, que puede ser etiquetada de remisión parcial42, pero en ningún caso de causa genética se alcanzará la remisión completa43,44.

La prevalencia de la GEFS de causa genética es elevada en niños (20-30%)39, la prevalencia en adultos varía desde alrededor del 22% en pacientes con historia familiar de enfermedad renal, hasta 10% en aquellos sin antecedentes familiares o en cohortes inespecíficas8,40,41,45,46. De ahí que el estudio genético se recomiende de forma general en pacientes con síndrome nefrótico de inicio temprano, especialmente en las formas resistentes a esteroides. Sin embargo, en población adulta la recomendación es más compleja. Las guías KDIGO recomiendan hacer una valoración individual de cada caso para indicar estudio genético, considerando como características a tener en cuenta la coexistencia de cuadros sindrómicos o de antecedentes familiares. La presencia de historia familiar aumenta la probabilidad de que una mutación sea la responsable del daño podocitario, si bien en una serie recientemente publicada hasta el 55% de los casos con variantes genéticas no tenían antecedentes familiares evidentes22. Esta misma publicación ha desvelado que en pacientes con proteinuria de lenta progresión sin una causa secundaria evidente, se encontró una variante genética en el 33% de los casos estudiados. Este porcentaje fue incluso mayor cuando el paciente presentaba microhematuria persistente con hematíes dismórficos, circunstancia que nos debe hacer sospechar una enfermedad relacionada con el colágeno IV.

El microscopio electrónico no resulta de utilidad para diagnosticar o sospechar GEFS de etiología genética. Aquellas formas con síndrome nefrótico completo en el momento de la biopsia renal mostrarán fusión pedicelar extensa, mientras que aquellas sin síndrome nefrótico mostrarán una fusión pedicelar solo parcial. Ocasionalmente, en GEFS asociada a mutaciones del colágeno IV, el microscopio electrónico muestra una membrana basal glomerular fina (<180nm en niños y <250nm en adultos)47, dato que podría ser indicación de estudio genético.

En la actualidad, el método más usado para el diagnóstico genético es la secuenciación masiva. Estas técnicas permiten la secuenciación simultánea de los exones de un conjunto de genes, o de todos los exones (secuenciación de exoma) o del genoma completo. La técnica de Sanger actualmente se utiliza para secuenciar genes pequeños o para confirmar una variante identificada previamente por secuenciación masiva48–50. Los paneles de genes asociados a varias enfermedades han resultado ser útiles en nefrología, por lo que son una buena herramienta cuando buscamos enfermedades sin un fenotipo específico, como en el caso de la GEFS de causa genética51,52.

Indicaciones de estudio genético en GEFS

De acuerdo con las situaciones de la práctica clínica habitual y a las dificultades que puede suponer en ciertos centros el acceso a la realización de estudios genéticos, hemos planteado el algoritmo de actuación mostrado en la figura 1.

Figura 1.

Algoritmo propuesto para estudio genético en adultos con glomeruloesclerosis segmentaria y focal (GEFS).

(0.3MB).

Aunque muchos de los genes causantes de GEFS dan lugar a una enfermedad con inicio en la infancia, el amplio espectro fenotípico no permite descartar estos genes como causante de una enfermedad de inicio en edad adulta. Por este motivo, los paneles de genes deben incluir todos los genes causantes de nefropatía glomerular.

Algunos genes causantes de otras enfermedades hereditarias, como tubulopatías (CLCN5, OCRL), microangiopatía trombótica (DKGE, CFH), ciliopatías (UMOD, NPHP4)53, enfermedad de depósito como la enfermedad de Fabry (GLA)39 y genes causantes de anomalías congénitas del riñón y tracto urinario (CAKUT pos sus siglas en inglés) podrían presentarse con un patrón de GEFS en la biopsia54.

La tabla 1 describe los genes que se han asociado a GEFS de causa genética y sus características clínicas. Se han dividido de acuerdo a si los pacientes presentan manifestaciones extrarrenales como parte de un cuadro sindrómico o si son causantes de GEFS como única manifestación. Hasta la actualidad hay más de 60 genes asociados; sin embargo, tenemos que tener en cuenta que conforme avanza la investigación se van descubriendo nuevos genes, y que la GEFS puede deberse a alteraciones del podocito, de la membrana basal glomerular y sus componentes, pero también puede ser la cicatriz de enfermedad renal de cualquier origen54 (tabla 1).

Tabla 1.

Genes asociados a glomeruloesclerosis focal y segmentaria y sus características clínicas

Gen  Localización  Inicio habitual  Fenotipo  Herencia  Manifestaciones extrarrenales 
ACTN439,41  19q13.1  Adulto joven  GEFS, rara vez produce SN  AD  Ninguna 
ANLN39,41  7p14  Infancia hasta adulto joven  GEFS, SNCR  AD  Ninguna 
APOL155,56  22q12.3  Individuos de raza negra  GEFS forma colapsante  AR  Ninguna.Nota: Existen dos variantes de riesgo: G1 que contiene dos aminoácidos (S342G y I384M) cerca de la terminación C de APOL1. G2 es una deleción de dos aminoácidos (del388N389Y) que se produce en el mismo dominio funcional de APOL1 que G1. Estos haplotipos de riesgo pueden intervenir en varias patologías en pacientes de raza negra, confieren mayor riesgo de nefropatía VIH, nefropatía hipertensiva, LES con características colapsantes, entre otras. La bibliografía indica, incluso, que este riesgo se encuentra no sólo en individuos africanos o negros, sino también en individuos de grupos con una ascendencia africana reciente significativa, como los latinos 
ARHGAP2439,57  4q21  Adolescencia  GEFS  AD  Ninguna 
ARHGDIA58  17q25.3  Congénito  Síndrome nefrótico congénito  AR  Ninguna, la histología puede presentar esclerosis mesangial difusa (raramente pueden causar: déficit intelectual, sordera neurosensorial, epilepsia y ceguera cortical) 
CD2AP59,60  6p12  Infantil, adulto joven  GEFS, SNCR  AD/AR  Ninguna 
COL4A3, COL4A461,62  2q36-37, 2q35-57  Adulto joven. La forma dominante puede manifestarse más tarde  GEFS, microhematuria dismórfica  AD/AR  Las formas AR pueden tener manifestaciones extrarrenales similar a las de COL4A5 
COQ8B (previamente se conocía como ADCK4)39,63  19q13  Infantil, adolescencia hasta adulto joven  SNCR, GEFS  AR  Raras las manifestaciones extrarrenales, fenotipo más leve. Déficit de CoQ10 
EMP239  16p13.2  Infantil  SNCS  AR/AD  Se ha descrito en familias con SNCS 
KANK1, KANK2, KANK464,65  9p24.3, 19p13.2, 1p31.3  Pocos casos reportados, <3 años  SNCR  AR  Existen pocos casos, alguno de ellos presentó microhematuria, y algún paciente presentó dismorfia facial, cardiomiopatía 
KIRREL166  1q23.1  Infancia hasta adolescencia  SNCR  AR  Ninguna 
LAMA567,68  20q13.2-q13.3  Infancia hasta adulto joven  GEFS, SNCR  AD  En ocasiones se han descrito defectos pulmonares como deformidad bronquial y dilatación alveolar 
LMNA69  1q21.2-q1.3  Adulto joven  GEFS, SNCR  AD  Lipodistrofia familiar parcial 
MAGI270  7q11.23-q21.11  Congénito, infantil  Síndrome nefrótico congénito, SNCR, GEFS  AR  Ninguna 
MYO1E (miosina-1E)71  15q22.2  Primera infancia  SNCR, GEFS  AR  Ninguna 
MYO9A (miosina 9-A)72  15q23  Adolescencia, adulto joven  GEFS  AD  Ninguna, pocos casos reportados 
NPHS1 (nefrina)73–75  19q13.1  Congénito, neonatal, infantil  Síndrome nefrótico congénito  AR  Ninguna 
NPHS2 (podocina)75–77  1q25  Congénito, hasta adulto joven  Síndrome nefrótico congénito, GEFS, SNCR  AR  Ninguna 
NUCLEOPORINAS: NUP 93, NUP205, NUP85, NUP160, NUP107, NUP13378–80  16q13,7q33, 17q25, 11p11.2, 12q15, 1q42.13  Infancia hasta adolescencia  SNCR, GEFS  AR  Ninguna. Biopsia puede presentar esclerosis mesangial difusaNUP93 se ha reportado que podría causar GEFS colapsante 
PLCE181  10q23.33  Infantil  SNCR, GEFS  AR  Ninguna. La anatomía patológica puede presentar esclerosis mesangial difusa 
PODXL82  7q32.3  Adulto joven  GEFS  AD  Ninguna 
PTPRO, conocido también como GLEPP183  12p12.3  Infancia hasta adulto joven  SNCR, GEFS  AR  Ninguna 
SGPL184,85  10q22.1  Congénito, neonatal, se han reportado casos en adolescencia  SNCR  AR  Pocos casos reportados 
TBC1D8B86,87  Xq22  Puede ir desde neonatal hasta adulto joven  GEFS, SNCR  LX  Ninguna 
TRPC639  11q22.  Adulto joven  GEFS, SNCR  AD  Ninguna 
TTC21B88,89  2q24.3  Infancia hasta adolescencia  GEFS asociado a lesiones tubulointersticiales  AR/AD  Se ha reportado en algunos casos HTA y miopía 
XPO578  6p21.1  Similar a nucleoporinas  SNCR, GEFS  AR  Ninguna 
ALG190,91  16p13.3  Congénito  Síndrome nefrótico congénito  AR  Se asocia a trastornos en la glicosilación con microcefalia, retraso del desarrollo, distribución anormal de la grasa, estrabismo y anomalías de la coagulación 
AVIL92  12q14.1  Infantil  SN en los primeros tres años de vida, GEFS  AR  Se ha asociado a microcefalia, talla baja, distrofia retiniana, cataratas, sordera, retraso del desarrollo 
COL4A561,93  Xq22  Infantil, adulto joven  GEFS, microhematuria dismórfica  LX  Manifestaciones oculares: lenticono anterior, retinopatía (manchas retinianas), maculopatía. Manifestaciones auditivas: hipoacusia neurosensorial para tonos altos 
COQ694  14q24.3  Neonatal, infantil. Algún caso hasta adultez temprana  SNCR, GEFS  AR  Sordera neurosensorial. Algunos pacientes se pueden presentar con síntomas neurológicos como convulsiones, encefalopatía, dificultad en el desarrollo, ocasionalmente presentan retinopatía. Déficit de CoQ10 
COQ263,94  4q21  Neonatal, Infantil. Algún caso hasta adultez temprana  SNCR, GEFS  AR  Pueden presentar retinopatía, miopatía, fallo multiorgánico. Los síntomas neurológicos y del desarrollo intelectual suelen ser más frecuentes que en COQ2 y no se presenta con sordera neurosensorial. Déficit de CoQ10 
CRB295  9q33  Congénito, neonatal. La forma renal puede presentarse hasta infantil o adolescencia  Síndrome nefrótico congénito, SNCR, GEFS  AR  Algunos pacientes presentan solo la forma renal, pero otros pueden presentar niveles elevados de alfafetoproteína maternos, ventriculomegalia/hidrocefalia, en pocos pacientes se han descrito defectos cardíacos y oculares 
CUBN96  10p13  Infancia  GEFS excepcional, proteinuria no nefrótica  AR  Se han descrito casos de GEFS aislada. La CUBN también se ha asociado a otro síndrome (cuando está en homocigosis o heterocigosis compuesta); síndrome de Imerslund-Gräsbeck: malabsorción de vitamina B12 con anemia megaloblástica, retraso del crecimiento, infecciones recurrentes, alteraciones neurológicas, con o sin proteinuria, y función renal normal 
EYA118  8q13.3  Infancia, GEFS de inicio adulto (cuando es aislada)  GEFS, SNCR, Síndrome branquio-oto-renal  AD  Síndrome branquio-oto-renal: hipoacusia, malformaciones auriculares, restos del arco branquial y anomalías renales 
GLA54,97  Xq22.1  Juventud  GEFS  XL  Enfermedad de Fabry 
INF298  14q32.33  Adolescencia, adulto joven  GEFS, Charcot-Marie-Tooth (CMT)  AD  CMT: neuropatía periférica sensorial-motora progresiva, debilidad muscular y atrofia, llevando a incapacidad de caminar o agarrar objetos. Amiotrofia simétrica, deformidad en manos y pies (pie cavo, manos arqueadas) 
ITGA393  17q21  Congénito  Síndrome nefrótico congénito  AR  Epidermólisis bullosa, enfermedad pulmonar intersticial 
ITGB4, CD15154,99  17q25.1, 11p15.5  Congénito  Síndrome nefrótico congénito  AR  Epidermólisis bullosa, atresia pilórica y ocasionalmente aplasia cutis. Han estado asociada a SN congénito 
LAMB239,93,100  3p21  Congénito, neonatal, infantil.  SNCR, GEFS, Síndrome de Pierson  AR  Síndrome de Pierson: microcoria (estrechamiento extremo no reactivo de las pupilas) debido a la hipoplasia de los músculos ciliar y pupilar. Muchos pacientes mueren en la primera infancia, y los que sobreviven, suelen presentar retraso del neurodesarrollo y pérdida visual 
LMX1B101,102  9q31.1  Desde infancia hasta adulto joven  GEFS, Síndrome uña-rótula  AD  Síndrome uña-rótula: se presentan con rótula hipoplásica o ausente, uñas distróficas, displasia de codos y cuernos ilíacos. Glaucoma de ángulo abierto (alrededor del 10% de pacientes con el síndrome) 
MTTL1, MTTL2, MTTY18,39,103  MtDNA  Infancia, GEFS de inicio adulto (cuando es aislada)  GEFS  Mitocondrial  Síndrome MELAS: encefalomiopatía mitocondrial, acidosis láctica, episodios de apoplejía. Se ha encontrado algún caso descrito con GEFS aislada 
MYH9104  22q12  Adulto joven, a veces asociada la forma colapsante  GEFS  AD  Trombocitopenia con plaquetas gigantes, leucocitos con cuerpos de inclusión citoplasmática (Döhle-like bodies), sordera neurosensorial, cataratas a edad tempranaNota: las manifestaciones hematológicas suelen estar ya presentes al nacimiento 
PAX2105–107  10q24  Adolescente, adulto joven  GEFS, síndrome oculopapilar  AD  Síndrome oculopapilar cursa con anomalías de tipo CAKUT asociado a manifestaciones extrarrenales como del SNC, oculares e hipoacusia neurosensorial 
PDSS2108  6q21  Congénito, neonatal  Síndrome nefrótico congénito  AR  Déficit CoQ10, fenotipo neurológico amplio que puede presentar miopatía, convulsiones, ataxia, dificultad con el desarrollo, hipotonía, neuropatía periférica, sordera neurosensorial, etc. Síndrome de Leigh: retraso del crecimiento, ataxia y sordera neurosensorial 
SCARB2109,110  4q21.1  Infancia tardía o adolescencia  SNCR, GEFS, síndrome mioclonías de acción-insuficiencia renal  AR  Síndrome de mioclonías de acción-insuficiencia renal: ocasiona una epilepsia mioclónica progresiva (EMP). Las manifestaciones renales muchas veces preceden la clínica neurológica y en ocasiones solo existe la presentación neurológica sin afectación renal. Depósitos C1q en biopsia renal 
SGPL184,85  10q22  Congénito, algún caso descrito hasta adolescencia  Síndrome nefrótico congénito, SNCR, GEFS  AR  Ictiosis, insuficiencia suprarrenal, linfopenia y retraso del desarrollo neurológico. Pueden causar esclerosis mesangial difusa 
SMARCAL154,95  2q35  Infantil, pero existen casos leves que se presentan hasta adultos  GEFS, SN  AR  Displasia espondiloepifisaria, inmunodeficiencia de células T. El 50% de pacientes puede presentar, además, hipotiroidismo, isquemia cerebral episódica; pocos pacientes pueden tener insuficiencia de la médula ósea 
WT1111,112  11p13  Desde infancia hasta adolescencia  GEFS, Síndrome de Frasier, Síndrome de Denys-Drash  AD  Síndrome de Frasier: pseudohermafroditismo en varones o genitales ambiguos, así como otras alteraciones genitales como hipospadias o criptorquidia, gonadoblastoma y raramente pueden presentar nefroblastoma o tumor de Wilms, amenorrea primaria. Síndrome de Denys-Drash: pseudohermafroditismo en varones, disgenesia gonadal, tumor de Wilms, ocasionalmente gonadoblastoma. Amenorrea primaria.Nota: en mujeres con cariotipo XX no hay anomalías de los órganos sexuales, podrían presentarse únicamente como SNCR en adolescencia 
WDR7393  15q25  Congénito, neonatal, infantil  SNCR, GEFS, Síndrome de Galloway-Mowat  AR  Síndrome de Galloway-Mowat: manifestaciones neurológicas (microcefalia, retardo del crecimiento, hipotonía, ataxia, alteraciones del comportamiento). Alteraciones dismórficas faciales (micrognatia, paladar con arco alto, hipertelorismo, microftalmos, nariz en pico, orejas de implantación baja o caídas, fosas nasales antevertidas). Alteraciones musculoesqueléticas (escoliosis, pectus excavatum, aracnodactilia, clinodactilia, campilodactilia, caderas dislocadas, pulgar bífido, entre otras). Defectos del septo cardiaco o miocardiopatía dilatada. Otras: hipotiroidismo, hernia de hiato, maculas hiperpigmentadas, retraso del crecimiento intrauterino y oligohidramnios.Nota: existen genes del conjunto que se asocian a GEFS como única manifestación, como los genes de nucleoporina 
WDR493  21q22  Congénito, neonatal, infantil  SNCR, GEFS, Síndrome de Galloway-Mowat  AR   
TP53RK93  20q13.12  Congénito, neonatal, infantil  SNCR, GEFS, Síndrome de Galloway-Mowat  AR   
TPRKB93  2p13.1  Congénito, neonatal, infantil  SNCR, GEFS, Síndrome de Galloway-Mowat  AR   
GON793  14q32.12  Congénito, neonatal, infantil  SNCR, GEFS, Síndrome de Galloway-Mowat  AR   
YRDC93  1p34.3  Congénito, neonatal, infantil  SNCR, GEFS, Síndrome de Galloway-Mowat  AR   
NUP10793  12q15  Congénito, neonatal, infantil  SNCR, GEFS, Síndrome de Galloway-Mowat  AR   
NUP13393  1q42.13  Congénito, neonatal, infantil  SNCR, GEFS, Síndrome de Galloway-Mowat  AR   
OSGEP93  14q11  Congénito, neonatal, infantil  SNCR, GEFS, Síndrome de Galloway-Mowat  AR   
LAGE393  Xq28  Congénito, neonatal, infantil  SNCR, GEFS, Síndrome de Galloway-Mowat  LX   
ZMPSTE24113  1p34.2  Desde infancia hasta adulto joven  GEFS  AR  Displasia mandibuloacral: anomalías esqueléticas como hipoplasia de la mandíbula y las clavículas y acro-osteólisis. La enfermedad renal puede diagnosticarse más tardíamente 
Otros genes que se han asociado a GEFS: CLCN5, OCRL, UMOD, NPHP4, DKGE, CFH, EMP2, FAT1, PMM2, DCL1, EXT1, GATA3, MAFB, NXF5, ANKFY1, GAPVD1, MRXA5, CDK20, COG1, E2F3, DHTKD1, SLC35F154,99,114.

SN: síndrome nefrótico; SNCR: síndrome nefrótico corticorresistente; SNCS: síndrome nefrótico corticosensible; GEFS: glomeruloesclerosis focal y segmentaria; AR: autosómica recesiva; AD: autosómica dominante; LX: ligado al X; mtDNA: DNA mitocondrial.

Colores: Verde: GEFS como única manifestación; Naranja: GEFS como parte de cuadro sindrómico o con manifestaciones extrarrenales.

En la tabla 2 resumimos las indicaciones de estudio genético en pacientes con GEFS.

Tabla 2.

Indicaciones de estudio genético en adultos con glomeruloesclerosis focal y segmentaria

Indicaciones de estudio genético en adultos con GEFS 
1. Pacientes con GEFS diagnosticada a cualquier edad y antecedentes familiares de ERC 
2. Pacientes con GEFS y cuadros sindrómicos 
3. Pacientes con GEFS y antecedentes familiares de consanguinidad 
4. Pacientes con GEFS diagnosticada a cualquier edad y presencia de microhematuria persistente con hematíes dismórficos 
5. Pacientes con GEFS y síndrome nefrótico corticorresistente 
6. Pacientes con GEFS y proteinuria de cualquier rango con albúmina normal, una vez descartada causa secundaria 
Conflicto de intereses

Los autores declaran no tener ningún conflicto de intereses.

Bibliografía
[1]
A. Shabaka, A. Tato Ribera, G. Fernández-Juárez.
Focal Segmental Glomerulosclerosis: State-of-the-Art and Clinical Perspective.
Nephron., 144 (2020), pp. 413-427
[2]
A.Z. Rosenberg, J.B. Kopp.
Focal Segmental Glomerulosclerosis.
Clin J Am Soc Nephrol., 12 (2017), pp. 502-517
[3]
Kidney Disease: Improving Global Outcomes (KDIGO) Glomerular Diseases Work Group.
KDIGO 2021 Clinical Practice Guideline for the Management of Glomerular Diseases.
Kidney Int., 100 (2021), pp. S1-S276
[4]
O. Gribouval, O. Boyer, A. Hummel, J. Dantal, F. Martinez, R. Sberro-Soussan, et al.
Identification of genetic causes for sporadic steroid-resistant nephrotic syndrome in adults.
Kidney Int., 94 (2018), pp. 1013-1022
[5]
C. Gast, R.J. Pengelly, M. Lyon, D.J. Bunyan, E.G. Seaby, N. Graham, et al.
Collagen (COL4A) mutations are the most frequent mutations underlying adult focal segmental glomerulosclerosis.
Nephrol Dial Transplant., 31 (2016), pp. 961-970
[6]
J. Miao, F. Pinto e Vairo, M.C. Hogan, S.B. Erickson, M. El Terds, A.J. Bentall, et al.
Identification of Genetic Causes of Focal Segmental Glomerulosclerosis Increases With Proper Patient Selection.
Mayo Clin Proc., 96 (2021), pp. 2342-2353
[7]
M.C. Braunisch, K.M. Riedhammer, P.M. Herr, S. Draut, R. Günthner, M. Wagner, et al.
Identification of disease-causing variants by comprehensive genetic testing with exome sequencing in adults with suspicion of hereditary FSGS.
Eur J Hum Genet., 29 (2021), pp. 262-270
[8]
T. Yao, K. Udwan, R. John, A. Rana, A. Haghighi, L. Xu, et al.
Integration of Genetic Testing and Pathology for the Diagnosis of Adults with FSGS.
Clin J Am Soc Nephrol., 14 (2019), pp. 213-223
[9]
S. Santín, G. Bullich, B. Tazón-Vega, R. García-Maset, I. Giménez, I. Silva, et al.
Clinical Utility of Genetic Testing in Children and Adults with Steroid-Resistant Nephrotic Syndrome.
Clin J Am Soc Nephrol., 6 (2011), pp. 1139-1148
[10]
N. Lepori, L. Zand, S. Sethi, G. Fernandez-Juarez, F.C. Fervenza.
Clinical and pathological phenotype of genetic causes of focal segmental glomerulosclerosis in adults.
Clin Kidney J., 11 (2018), pp. 179-190
[11]
J. Savige, B.S. Lipska-Zietkiewicz, E. Watson, J.M. Hertz, C. Celtas, F. Mari, et al.
Guidelines for Genetic Testing and Management of Alport Syndrome.
Clin J Am Soc Nephrol., 17 (2022), pp. 143-154
[12]
E. Königshausen, L. Sellin.
Circulating Permeability Factors in Primary Focal Segmental Glomerulosclerosis: A Review of Proposed Candidates.
Biomed Res Int., 2016 (2016), pp. 1-9
[13]
A.J.B. Watts, K.H. Keller, G. Lerner, I. Rosales, A.B. Collins, M. Sekulic, et al.
Discovery of Autoantibodies Targeting Nephrin in Minimal Change Disease Supports a Novel Autoimmune Etiology.
J Am Soc Nephrol., 33 (2022), pp. 238-252
[14]
Y. Shirai, K. Miura, K. Ishizuka, T. Ando, S. Kanda, J. Hashimoto, et al.
A multi-institutional study found a possible role of anti-nephrin antibodies in post-transplant focal segmental glomerulosclerosis recurrence.
Kidney Int., 105 (2024), pp. 608-617
[15]
F.E. Hengel, S. Dehde, M. Lassé, G. Zahner, L. Seifert, A. Schnarre, et al.
Autoantibodies Targeting Nephrin in Podocytopathies.
N Engl J Med., 391 (2024), pp. 422-433
[16]
M.S. Hommos, A.S. De Vriese, M.P. Alexander, S. Sethi, L. Vaughan, L. Zand, et al.
The Incidence of Primary vs Secondary Focal Segmental Glomerulosclerosis: A Clinicopathologic Study.
Mayo Clin Proc., 92 (2017), pp. 1772-1781
[17]
J.K.J. Deegens, H.B.P.M. Dijkman, G.F. Borm, E.J. Steenbergen, J.G. van den Berg, J.J. Weening, et al.
Podocyte foot process effacement as a diagnostic tool in focal segmental glomerulosclerosis.
Kidney Int., 74 (2008), pp. 1568-1576
[18]
A.S. De Vriese, S. Sethi, K.A. Nath, R.J. Glassock, F.C. Fervenza.
Differentiating Primary, Genetic, and Secondary FSGS in Adults: A Clinicopathologic Approach.
J Am Soc Nephrol., 29 (2018), pp. 759-774
[19]
S.M. Korbet.
Treatment of primary FSGS in adults.
J Am Soc Nephrol., 23 (2012), pp. 1769-1776
[20]
E.M. Hodson, A. Sinha, T.E. Cooper.
Interventions for focal segmental glomerulosclerosis in adults.
Cochrane Database Syst Rev., 2 (2022),
[21]
L. Senthil Nayagam, A. Ganguli, M. Rathi, H.S. Kohli, K.L. Gupta, K. Joshi, et al.
Mycophenolate mofetil or standard therapy for membranous nephropathy and focal segmental glomerulosclerosis: a pilot study.
Nephrol Dial Transplant., 23 (2008), pp. 1926-1930
[22]
A.M. Tato, N. Carrera, M. García-Murias, A. Shabaka, A. Ávila, M.T. Mora Mora, et al.
Genetic testing in focal segmental glomerulosclerosis: in whom and when?.
Clin Kidney J., 16 (2023), pp. 2011-2022
[23]
C. Faul, M. Donnelly, S. Merscher-Gomez, Y.H. Chang, S. Franz, J. Delfgaauw, et al.
The actin cytoskeleton of kidney podocytes is a direct target of the antiproteinuric effect of cyclosporine A.
Nat Med., 14 (2008), pp. 931-938
[24]
R.J.H. Maas, J.K.J. Deegens, J.A.J.G. van den Brand, E.A.M. Cornelissen, J.F.M. Wetzels.
A retrospective study of focal segmental glomerulosclerosis: clinical criteria can identify patients at high risk for recurrent disease after first renal transplantation.
BMC Nephrol., 14 (2013), pp. 47
[25]
M. Campise, E. Favi, P. Messa.
Clinical Outcomes of Prophylactic and Therapeutic Plasmapheresis in Adult Deceased-Donor Kidney Transplant Recipients With Primary Focal Segmental Glomerulosclerosis.
Exp Clin Transplant., 17 (2019),
[26]
P. Auñón, N. Polanco, M.J. Pérez-Sáez, E. Rodrigo, A. Sancho, J. Pascual, et al.
Pre-emptive rituximab in focal and segmental glomerulosclerosis patients at risk of recurrence after kidney transplantation.
Clin Kidney J., 14 (2021), pp. 139-148
[27]
A.Z. Rosenberg, J.B. Kopp.
Focal segmental glomerulosclerosis.
Clin J Am Soc Nephrol., 12 (2017), pp. 502-517
[28]
A.B. Fogo.
Causes and pathogenesis of focal segmental glomerulosclerosis.
Nat Rev Nephrol., 11 (2015), pp. 76-87
[29]
V.D. D’Agati, A. Chagnac, A.P.J. De Vries, M. Levi, E. Porrini, M. Herman-Edelstein, et al.
Obesity-related glomerulopathy: clinical and pathologic characteristics and pathogenesis.
Nat Rev Nephrol., 12 (2016), pp. 453-471
[30]
H.G. Rennke, P.S. Klein.
Pathogenesis and Significance of Nonprimary Focal and Segmental Glomerulosclerosis.
Am J Kidney Dis., 13 (1989), pp. 443-456
[31]
W. Kriz, K.V. Lemley.
A Potential Role for Mechanical Forces in the Detachment of Podocytes and the Progression of CKD.
J Am Soc Nephrol., 26 (2015), pp. 258-269
[32]
W. Kriz, K.V. Lemley.
Potential relevance of shear stress for slit diaphragm and podocyte function.
Kidney Int., 91 (2017), pp. 1283-1286
[33]
M. Cortinovis, N. Perico, P. Ruggenenti, A. Remuzzi, G. Remuzzi.
Glomerular hyperfiltration.
Nat Rev Nephrol., 18 (2022), pp. 435-451
[34]
S. Kudose, I. Batal, D. Santoriello, K. Xu, J. Barasch, Y. Peleg, et al.
Kidney Biopsy Findings in Patients with COVID-19.
J Am Soc Nephrol., 31 (2020), pp. 1959-1968
[35]
V.D. D’Agati, F.J. Kaskel, R.J. Falk.
Focal Segmental Glomerulosclerosis.
N Engl J Med., 365 (2011), pp. 2398-2411
[36]
K. Yau, R. Kuah, D.Z.I. Cherney, T.K.T. Lam.
Obesity and the kidney: mechanistic links and therapeutic advances.
Nat Rev Endocrinol., 20 (2024), pp. 321-335
[37]
M. Praga, B. Borstein, A. Andres, J. Arenas, A. Oliet, C. Montoyo, et al.
Nephrotic proteinuria without hypoalbuminemia: clinical characteristics and response to angiotensin-converting enzyme inhibition.
Am J Kidney Dis., 17 (1991), pp. 330-338
[38]
M.N. Rheault, C.E. Alpers, J. Barratt, S. Bieler, P. Canetta, D.W. Chae, et al.
Sparsentan versus Irbesartan in Focal Segmental Glomerulosclerosis.
N Engl J Med., 389 (2023), pp. 2436-2445
[39]
M. Sambharia, P. Rastogi, C.P. Thomas.
Monogenic focal segmental glomerulosclerosis: A conceptual framework for identification and management of a heterogeneous disease.
Am J Med Genet C Semin Med Genet., 190 (2022), pp. 377-398
[40]
C. Gast, R.J. Pengelly, M. Lyon, D.J. Bunyan, E.G. Seaby, N. Graham, et al.
Collagen (COL4A) mutations are the most frequent mutations underlying adult focal segmental glomerulosclerosis.
Nephrol Dial Transplant., 31 (2016), pp. 961-970
[41]
E.S. Sen, P. Dean, L. Yarram-Smith, A. Bierzynska, G. Woodward, C. Buxton, et al.
Clinical genetic testing using a custom-designed steroid-resistant nephrotic syndrome gene panel: Analysis and recommendations.
J Med Genet., 54 (2017), pp. 795-804
[42]
R. Li, W. Dong, Y. Chen, T. Tang, X. Zhao, L. Zhang, et al.
Effect of cyclosporine A on focal segmental glomerulosclerosis caused by MYO1E mutation in a Chinese adult patient: A case report.
Medicine (Baltimore)., 102 (2023), pp. e32683
[43]
M.C. Gubler.
Nephrotic syndrome: Genetic testing in steroid-resistant nephrotic syndrome.
Nat Rev Nephrol., 7 (2011), pp. 430-431
[44]
A.S. De Vriese, S. Sethi, K.A. Nath, R.J. Glassock, F.C. Fervenza.
Differentiating primary, genetic, and secondary FSGS in adults: A clinicopathologic approach.
J Am Soc Nephrol., 29 (2018), pp. 759-774
[45]
D.M. Connaughton, C. Kennedy, S. Shril, N. Mann, S.L. Murray, P.A. Williams, et al.
Monogenic causes of chronic kidney disease in adults.
Kidney Int., 95 (2019), pp. 914-928
[46]
E.E. Groopman, M. Marasa, S. Cameron-Christie, S. Petrovski, V.S. Aggarwal, H. Milo-Rasouly, et al.
Diagnostic Utility of Exome Sequencing for Kidney Disease.
N Engl J Med., 380 (2019), pp. 142-151
[47]
M. Uzzo, G. Moroni, C. Ponticelli.
Thin Basement Membrane: An Underrated Cause of End-Stage Renal Disease.
Nephron., 147 (2023), pp. 383-391
[48]
N. Knoers, C. Antignac, C. Bergmann, K. Dahan, S. Giglio, L. Heidet, et al.
Genetic testing in the diagnosis of chronic kidney disease: Recommendations for clinical practice.
Nephrol Dial Transplant., 37 (2022), pp. 239-254
[49]
Ars E. Enfoque genético de las enfermedades renales hereditarias. En: Lorenzo V, Lopez Gomez J.M. (Eds). Nefrología al día [consultado 15 Jun 2024]. Disponible en: https://nefrologiaaldia.org/es-articulo-enfoque-genetico-enfermedades-renales-hereditarias-359.
[50]
E.E. Groopman, H.M. Rasouly, A.G. Gharavi.
Genomic medicine for kidney disease.
Nat Rev Nephrol., 14 (2018), pp. 83-104
[51]
A. Domingo-Gallego, M. Pybus, G. Bullich, M. Furlano, L. Ejarque-Vila, L. Lorente-Grandoso, et al.
Clinical utility of genetic testing in early-onset kidney disease: seven genes are the main players.
Nephrol Dial Transplant., 37 (2021), pp. 687-696
[52]
G. Bullich, A. Domingo-Gallego, I. Vargas, P. Ruiz, L. Lorente-Grandoso, M. Furlano, et al.
A kidney-disease gene panel allows a comprehensive genetic diagnosis of cystic and glomerular inherited kidney diseases.
Kidney Int., 94 (2018), pp. 363-371
[53]
J. Chun, M. Wang, M.S. Wilkins, A.U. Knob, A. Benjamin, L. Bu, et al.
Autosomal Dominant Tubulointerstitial Kidney Disease—Uromodulin Misclassified as Focal Segmental Glomerulosclerosis or Hereditary Glomerular Disease.
Kidney Int Rep., 5 (2020), pp. 519-529
[54]
A. Mitrotti, M. Giliberti, V. Di Leo, I. Di Bari, P. Pontrelli, L. Gesualdo.
Hidden genetics behind glomerular scars: an opportunity to understand the heterogeneity of focal segmental glomerulosclerosis?.
Pediatr Nephrol., 39 (2024), pp. 1685-1707
[55]
D.J. Friedman, M.R. Pollak.
APOL1 nephropathy: From genetics to clinical applications.
Clin J Am Soc Nephrol., 16 (2021), pp. 294-303
[56]
D.J. Friedman, M.R. Pollak.
APOL1 and Kidney Disease: From Genetics to Biology.
Annu Rev Physiol., 82 (2020), pp. 323-342
[57]
R.A. Gbadegesin, M.P. Winn, W.E. Smoyer.
Genetic testing in nephrotic syndrome - Challenges and opportunities.
Nat Rev Nephrol., 9 (2013), pp. 179-184
[58]
I.R. Gupta, C. Baldwin, D. Auguste, K.C. Ha, J. El Andalousi, S. Fahiminiya, et al.
ARHGDIA: A novel gene implicated in nephrotic syndrome.
J Med Genet., 50 (2013), pp. 330-338
[59]
M. Gigante, P. Pontrelli, E. Montemurno, L. Roca, F. Aucella, R. Penza, et al.
CD2AP mutations are associated with sporadic nephrotic syndrome and focal segmental glomerulosclerosis (FSGS).
Nephrol Dial Transplant., 24 (2009), pp. 1858-1864
[60]
T. Takano, E. Bareke, N. Takeda, L. Aoudjit, C. Baldwin, P. Pisano, et al.
Recessive mutation in CD2AP causes focal segmental glomerulosclerosis in humans and mice.
Kidney Int., 95 (2019), pp. 57-61
[61]
J. Savige, P. Harraka.
Pathogenic Variants in the Genes Affected in Alport Syndrome (COL4A3–COL4A5) and Their Association With Other Kidney Conditions: A Review.
Am J Kidney Dis., 78 (2021), pp. 857-864
[62]
K.V. Solanki, Y. Hu, B.S. Moore, V. Abedi, V. Avula, T. Mirshahi, et al.
The Phenotypic Spectrum of COL4A3 Heterozygotes.
Kidney Int Rep., 8 (2023), pp. 2088-2099
[63]
S. Drovandi, B.S. Lipska-Ziętkiewicz, F. Ozaltin, F. Emma, B. Gulhan, O. Boyer, et al.
Variation of the clinical spectrum and genotype-phenotype associations in Coenzyme Q10 deficiency associated glomerulopathy.
Kidney Int., 102 (2022), pp. 592-603
[64]
S.J. Allison.
The KANK family in podocyte function.
Nat Rev Nephrol., 11 (2015),
[65]
H.Y. Gee, F. Zhang, S. Ashraf, S. Kohl, C.E. Sadowski, V. Vega-Warner, et al.
KANK deficiency leads to podocyte dysfunction and nephrotic syndrome.
J Clin Invest., 125 (2015), pp. 2375-2384
[66]
A.K. Solanki, E. Widmeier, E. Arif, S. Sharma, A. Daga, P. Srivastava, et al.
Mutations in KIRREL1, a slit diaphragm component, cause steroid-resistant nephrotic syndrome.
Kidney Int., 96 (2019), pp. 883-889
[67]
J.Y. Kaimori, Y. Kikkawa, D. Motooka, T. Namba-Hamano, A. Takuwa, A. Okazaki, et al.
A heterozygous LAMA5 variant may contribute to slowly progressive, vinculin-enhanced familial FSGS and pulmonary defects.
[68]
J. Savige, P. Harraka.
Pathogenic LAMA5 Variants and Kidney Disease.
Kidney360., 2 (2021), pp. 1876-1879
[69]
K.M. Thong, Y. Xu, J. Cook, A. Takou, B. Wagner, B. Kawar, et al.
Cosegregation of focal segmental glomerulosclerosis in a family with familial partial lipodystrophy due to a mutation in LMNA.
Nephron Clin Pract., 124 (2013), pp. 31-37
[70]
A. Bierzynska, K. Soderquest, P. Dean, E. Colby, R. Rollason, C. Jones, et al.
MAGI2 mutations cause congenital nephrotic syndrome.
J Am Soc Nephrol., 28 (2017), pp. 1614-1621
[71]
M. Krendel, S. Leh, M.E. Garone, A. Edwards-Richards, J.J. Lin, D. Brackman, et al.
Focal segmental glomerulosclerosis and proteinuria associated with Myo1E mutations: novel variants and histological phenotype analysis.
Pediatr Nephrol., 38 (2023), pp. 439-449
[72]
Q. Li, A. Gulati, M. Lemaire, T. Nottoli, A. Bale, A. Tufro.
Rho-GTPase Activating Protein myosin MYO9A identified as a novel candidate gene for monogenic focal segmental glomerulosclerosis.
Kidney Int., 99 (2021), pp. 1102-1117
[73]
A. Kaukinen, A.M. Kuusniemi, I. Lautenschlager, H. Jalanko.
Glomerular endothelium in kidneys with congenital nephrotic syndrome of the Finnish type (NPHS1).
Nephrol Dial Transplant., 23 (2008), pp. 1224-1232
[74]
J. Patrakka, M. Kestilä, J. Wartiovaara, V. Ruotsalainen, P. Tissari, U. Lenkkeri, et al.
Congenital nephrotic syndrome (NPHS1): Features resulting from different mutations in Finnish patients.
Kidney Int., 58 (2000), pp. 972-980
[75]
M.R. Pollak.
The genetic basis of FSGS and steroid-resistant nephrosis.
Semin Nephrol., 23 (2003), pp. 141-146
[76]
S.J. Tonna, A. Needham, K. Polu, A. Uscinski, G.B. Appel, R.J. Falk, et al.
NPHS2 variation in focal and segmental glomerulosclerosis.
BMC Nephrol., 9 (2008), pp. 13
[77]
C.E. Sadowski, S. Lovric, S. Ashraf, W.L. Pabst, H.Y. Gee, S. Kohl, et al.
A Single-Gene Cause in 29.5% of Cases of Steroid-Resistant Nephrotic Syndrome.
J Am Soc Nephrol., 26 (2015), pp. 1279-1289
[78]
D.A. Braun, C.E. Sadowski, S. Kohl, S. Lovric, S.A. Astrinidis, W.L. Pabst, et al.
Mutations in nuclear pore genes NUP93, NUP205 and XPO5 cause steroid-resistant nephrotic syndrome.
Nat Genet., 48 (2016), pp. 457-465
[79]
D.A. Braun, S. Lovric, D. Schapiro, R. Schneider, J. Marquez, M. Asif, et al.
Mutations in multiple components of the nuclear pore complex cause nephrotic syndrome.
J Clin Invest., 128 (2018), pp. 4313-4328
[80]
R.K. Cason, A. Williams, M. Chryst-Stangl, G. Wu, K. Huggins, K.E. Brathwaite, et al.
Collapsing Focal Segmental Glomerulosclerosis in Siblings With Compound Heterozygous Variants in NUP93 Expand the Spectrum of Kidney Phenotypes Associated With Nucleoporin Gene Mutations.
Front Pediatr., 10 (2022), pp. 1-7
[81]
B. Hinkes, R.C. Wiggins, R. Gbadegesin, C.N. Vlangos, D. Seelow, G. Nürnberg, et al.
Positional cloning uncovers mutations in PLCE1 responsible for a nephrotic syndrome variant that may be reversible.
Nat Genet., 38 (2006), pp. 1397-1405
[82]
D. Marx, S. Caillard, J. Olagne, B. Moulin, T. Hannedouche, G. Touchard, et al.
Atypical focal segmental glomerulosclerosis associated with a new PODXL nonsense variant.
Mol Genet Genomic Med., 9 (2021), pp. 1-9
[83]
F. Ozaltin, T. Ibsirlioglu, E.Z. Taskiran, D.E. Baydar, F. Kaymaz, M. Buyukcelik, et al.
Disruption of PTPRO causes childhood-onset nephrotic syndrome.
Am J Hum Genet., 89 (2011), pp. 139-147
[84]
E.F. Carney.
SGPL1 mutations cause a novel SRNS syndrome.
Nat Rev Nephrol., 13 (2017), pp. 191
[85]
T. Tastemel Ozturk, N. Canpolat, S. Saygili, U.S. Bayrakci, O. Soylemezoglu, F. Ozaltin, et al.
A rare cause of nephrotic syndrome—sphingosine-1-phosphate lyase (SGPL1) deficiency: 6 cases and a review of the literature.
Pediatr Nephrol., 38 (2023), pp. 711-719
[86]
G. Dorval, V. Kuzmuk, O. Gribouval, G.I. Welsh, A. Bierzynska, A. Schmitt, et al.
TBC1D8B Loss-of-Function Mutations Lead to X-Linked Nephrotic Syndrome via Defective Trafficking Pathways.
Am J Hum Genet., 104 (2019), pp. 348-355
[87]
Z. Fang, C. Zhang, Y. Jin, J. Tong, J. Liu, X. Hao, et al.
Adult-Onset Focal Segmental Glomerulosclerosis With Steroid-Dependent Nephrotic Syndrome Caused by a Novel TBC1D8B Variant: A Case Report and Literature Review.
Am J Kidney Dis., 81 (2023), pp. 240-244
[88]
G. Bullich, I. Vargas, D. Trujillano, S. Mendizábal, J.A. Piñero-Fernández, G. Fraga, et al.
Contribution of the TTC21B gene to glomerular and cystic kidney diseases.
Nephrol Dial Transplant., 32 (2017), pp. 151-453156
[89]
E.H. Cong, A.A. Bizet, O. Boyer, S. Woerner, O. Gribouval, E. Filhol, et al.
A Homozygous Missense Mutation in the Ciliary Gene TTC21B Causes Familial FSGS.
J Am Soc Nephrol., 25 (2014), pp. 2435-2443
[90]
L.A. Harshman, B.G. Ng, H.H. Freeze, P. Trapane, A. Dolezal, P.D. Brophy, et al.
Congenital nephrotic syndrome in an infant with ALG1-congenital disorder of glycosylation.
Pediatr Int., 58 (2016), pp. 785-788
[91]
C.E. Sadowski, S. Lovric, S. Ashraf, W.L. Pabst, H.Y. Gee, S. Kohl, et al.
A single-gene cause in 29.5% of cases of steroid-resistant nephrotic syndrome.
J Am Soc Nephrol., 26 (2015), pp. 1279-1289
[92]
Lipska-Zietkiewicz BS. Genetic Steroid-Resistant Nephrotic Syndrome Overview 1. Clinical Characteristics of Genetic Steroid-Resistant Nephrotic Syndrome 2. Causes of Genetic Steroid-Resistant Nephrotic Syndrome. GeneReviews InternetReviews. Published online 2022:1-15 [consultado 15 Jun 2024]. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK573219/
[93]
O. Boyer, G. Mollet, G. Dorval.
Neurological involvement in monogenic podocytopathies.
Pediatr Nephrol., 36 (2021), pp. 3571-3583
[94]
E. Park, Y.H. Ahn, H.G. Kang, K.H. Yoo, N.H. Won, K.B. Lee, et al.
COQ6 Mutations in Children With Steroid-Resistant Focal Segmental Glomerulosclerosis and Sensorineural Hearing Loss.
Am J Kidney Dis., 70 (2017), pp. 139-144
[95]
M. Adutwum, A. Hurst, G. Mirzaa, J.D. Kushner, C. Rogers, N. Khalek, et al.
Six new cases of CRB2-related syndrome and a review of clinical findings in 28 reported patients.
Clin Genet., 103 (2023), pp. 97-102
[96]
J. Yang, Y. Xu, L. Deng, L. Zhou, L. Qiu, Y. Zhang, et al.
CUBN gene mutations may cause focal segmental glomerulosclerosis (FSGS) in children.
BMC Nephrol., 23 (2022), pp. 1-8
[97]
C.A.B. Silva, J.A. Moura-Neto, M.A. Dos Reis, O.M. Vieira Neto, F.C. Barreto.
Renal Manifestations of Fabry Disease: A Narrative Review.
Can J Kidney Health Dis., 8 (2021),
[98]
O. Boyer, F. Nevo, E. Plaisier, B. Funalot, O. Gribouval, G. Benoit, et al.
INF2 Mutations in Charcot–Marie–Tooth Disease with Glomerulopathy.
N Engl J Med., 365 (2011), pp. 2377-2388
[99]
I.M. Rood, J.K.J. Deegens, J.F.M. Wetzels.
Genetic causes of focal segmental glomerulosclerosis: implications for clinical practice.
Nephrol Dial Transplant., 27 (2012), pp. 882-890
[100]
A.S. AbuMaziad, R. Abusaleh, S. Bhati.
Congenital nephrotic syndrome.
J Perinatol., 41 (2022), pp. 2704-2712
[101]
O. Boyer, S. Woerner, F. Yang, E.J. Oakeley, B. Linghu, O. Gribouval, et al.
LMX1B mutations cause hereditary FSGS without extrarenal involvement.
J Am Soc Nephrol., 24 (2013), pp. 1216-1222
[102]
J.B. Kopp.
An expanding universe of FSGS genes and phenotypes: LMX1B mutations cause familial autosomal dominant FSGS lacking extrarenal manifestations.
J Am Soc Nephrol., 24 (2013), pp. 1183-1185
[103]
S. Lovric, S. Ashraf, W. Tan, F. Hildebrandt.
Genetic testing in steroid-resistant nephrotic syndrome: when and how?.
Nephrol Dial Transplant., 31 (2016), pp. 1802-1813
[104]
N. Singh, N. Nainani, P. Arora, R.C. Venuto.
CKD in MYH9-Related Disorders.
Am J Kidney Dis., 54 (2009), pp. 732-740
[105]
M. Barua, E. Stellacci, L. Stella, A. Weins, G. Genovese, V. Muto, et al.
Mutations in PAX2 associate with adult-onset FSGS.
J Am Soc Nephrol., 25 (2014), pp. 1942-1953
[106]
R. Hu, Y. Wen, W. Ye, L. Zhang, N. Si, K. Zheng.
FSGS in Chinese twins with a de novo PAX2 mutation: a case report and review of the literature.
J Nephrol., 34 (2021), pp. 2155-2158
[107]
A. Vivante, O.S. Chacham, S. Shril, R. Schreiber, S.M. Mane, B. Pode-Shakked, et al.
Dominant PAX2 mutations may cause steroid-resistant nephrotic syndrome and FSGS in children.
Pediatr Nephrol., 34 (2019), pp. 1607-1613
[108]
L.C. López, M. Schuelke, C.M. Quinzii, T. Kanki, R.J. Rodenburg, A. Naini, et al.
Leigh syndrome with nephropathy and CoQ10 deficiency due to decaprenyl diphosphote synthase subunit 2 (PDSS2) mutations.
Am J Hum Genet., 79 (2006), pp. 1125-1129
[109]
S. Lovric, S. Goncalves, H.Y. Gee, B. Oskouian, H. Srinivas, W.I. Choi, et al.
Mutations in sphingosine-1-phosphate lyase cause nephrosis with ichthyosis and adrenal insufficiency.
J Clin Invest., 127 (2017), pp. 912-928
[110]
R. Prasad, I. Hadjidemetriou, A. Maharaj, E. Meimaridou, F. Buonocore, M. Saleem, et al.
Sphingosine-1-phosphate lyase mutations cause primary adrenal insufficiency and steroid-resistant nephrotic syndrome.
J Clin Invest., 127 (2017), pp. 942-953
[111]
Y.H. Ahn, E.J. Park, H.G. Kang, S.H. Kim, H.Y. Cho, J.I. Shin, et al.
Genotype–phenotype analysis of pediatric patients with WT1 glomerulopathy.
Pediatr Nephrol., 32 (2017), pp. 81-89
[112]
G. Chernin, V. Vega-Warner, D.S. Schoeb, S.F. Heeringa, B. Ovunc, P. Saisawat, et al.
Genotype/phenotype correlation in nephrotic syndrome caused by WT1 mutations.
Clin J Am Soc Nephrol., 5 (2010), pp. 1655-1662
[113]
A.K. Agarwal, X.J. Zhou, R.K. Hall, K. Nicholls, A. Bankier, H. Van Esch, et al.
Focal segmental glomerulosclerosis in patients with mandibuloacral dysplasia owing to ZMPSTE24 deficiency.
J Investig Med., 54 (2006), pp. 208-213
[114]
T. Hermle, R. Schneider, D. Schapiro, D.A. Braun, A.T. van der Ven, J.K. Warejko, et al.
GAPVD1 and ANKFY1 Mutations Implicate RAB5 Regulation in Nephrotic Syndrome.
J Am Soc Nephrol., 29 (2018), pp. 2123-2138

Estos autores han contribuido por igual.

Copyright © 2024. Sociedad Española de Nefrología
Descargar PDF
Idiomas
Nefrología
Opciones de artículo
Herramientas
es en

¿Es usted profesional sanitario apto para prescribir o dispensar medicamentos?

Are you a health professional able to prescribe or dispense drugs?