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Patogenia de las vasculitis de vaso pequeño. Contribución de los anticuerpos nticitoplasmáticos ANCA
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E. MIRAPEIX
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NEFROLOGIA. Vol. XVIII. Núm. 1. 1998 FORMACION CONTINUADA Patogenia de las vasculitis de vaso pequeño. Contribución de los anticuerpos anticitoplasmáticos ANCA E. Mirapeix Servei de Nefrología. Hospital Clinic. Barcelona. INTRODUCCION La patogenia de las vasculitis antes de la aparición de los anticuerpos anticitoplasmáticos del neutrófilo (ANCA) era prácticamente desconocida, si bien se había atribuido a la acción de complejos inmunes por el hecho de que en el modelo experimental de la enfermedad aguda del suero aparecen lesiones de carácter vasculítico en los vasos sanguíneos. Sin embargo, en la mayoría de lesiones vasculíticas humanas no podemos demostrar depósitos de inmunoglobulinas ni complemento, lo cual ha servido para caracterizar a este tipo de enfermedades llamándolas inmunonegativas 1. Con la descripción de los anticuerpos anticitoplasmáticos y su fuerte asociación con los casos de vasculitis activa, se han comenzado a elaborar hipótesis en las que los ANCA están directamente involucrados en la patogénesis de la inflamación y daño vascular 2, 3. La hipótesis patogenética que actualmente parece tener más consistencia es la que postula por la combinación de un fenómeno desencadenante, tóxico o infeccioso, en un contexto de autoinmunidad 4, 5. Experimentos realizados in vitro y la asociación descrita entre las vasculitis de vaso pequeño, granulomatosis de Wegener (GW), poliangeítis microscópica (PAM) y la glomerulonefritis rápidamente progresiva inmunonegativa (GNRP) y el antecedente de una infección, sugieren que la infección podría ser un desencadenante de la aparición de las vasculitis. En 1983 Fauci y Pinching ya describen que la mayoría de vasculitis van precedidas de una infección de uno u otro tipo 6, 7. La asociación más consistentemente descrita es la del Staphilococus aureus, presente en las fosas nasales, y la enfermedad de Correspondencia: Dr. Eduard Mirapeix. Servei de Nefrología Hospital Clinic y Provincial Villarroel 170 08036 Barcelona Wegener. Stegeman y cols. 8 describen la asociación entre portadores crónicos de Stapah A junto a una mayor susceptibilidad a padecer recaídas en los enfermos de GW, al mismo tiempo que el tratamiento con Septrin reduce el índice de recaídas al eliminar el Staph A de las fosas nasales de estos enfermos 9. Falk y cols. observan que aproximadamente el 90% de pacientes con vasculitis asociada a ANCA inician su sintomatología con un síndrome gripal que precede a los síntomas de vasculitis 10. Otras asociaciones descritas hacen referencia a infecciones del tracto respiratorio o bronquiectasias y GNRP 11, 12, ANCA-MPO, o infecciones cutáneas por Staph A de la Pioderma gangrenosum y PAM, cANCA 13. La participación de la autoinmunidad en la patogenia de las vasculitis se basa en que los ANCA son autoanticuerpos dirigidos contra estructuras propias. Se basa también en que en las vasculitis los componentes del sistema inmunitario tienen un comportamiento anómalo tanto en suero como en los territorios inflamados. Por último, se basa también en que en esta enfermedad existe una buena respuesta a la medicación inmunosupresora. PARTICIPACION DEL LEUCOCITO POLIMORFONUCLEAR (PMN) (fig. 1) Cuando se produce un fenómeno inflamatorio como pueda ser el asociado a una infección, los leucocitos polimorfonucleares estimulados por productos bacterianos (LPS) o diferentes linfoquinas (TNF, IL1, IL6 y IL8) de los macrófagos se transforman en PMN activados 11, 14. Como resultado de esta activación se produce una liberación extracelular de sus enzimas lisosómicas de las que destacaremos la mieloperoxidasa (MPO) y la proteinasa 3 (PR3). Estas enzimas una vez liberadas al espacio extracelular son neutralizados en parte por sus inactivadores naturales entre los que destacamos la a-1antitripsina (a1AT) como inhibidor específico de la PR3 15. En 22 ANCA Y VASCULITIS Fig. 1.--Contribución de los anticuerpos anticitoplasmáticos (ANCA) en la patogenia de las vasculitis. 1. Neutrófilos activados por las linfoquinas secretadas por los macrófagos estimulados en el contexto del fenómeno inflamatorio. 2. Autoinmunidad desencadenada por la aparición de superantígenos y aparición de los ANCA anti-PR3 y anti-MPO. 3. Reconocimiento de las enzimas lisosómicas intracelulares traslocadas a la superficie del PMN por parte de los ANCA anti-MPO y anti-PR3. 4. Superactivación del PMN con gran liberación enzimática responsable de la necrosis vascular. 5. Adhesión celular y secreción enzimática en el lecho endotelial glomerular con necrosis y formación de semilunas epiteliales. condiciones normales la acción inflamatoria de las enzimas liberadas sólo tiene lugar cuando el PMN ha alcanzado el espacio intersticial después de haber migrado del espacio vascular 1. Durante el proceso de activación de los PMN tiene lugar un proceso que será de gran importancia cuando la activación se haga en presencia de ANCA. En los PMN activados por las linfoquinas inflamatorias, las enzimas lisosómicas intracelulares sufren un proceso de traslocación desplazándose hacia a membrana celular y se expresan en la superficie celular. Este fenómeno ha sido observado in vitro para la MPO 16 e in vivo e in vitro para la PR3 17, 18 y no es específico de las vasculitis ya que se produce en cualquier circunstancia de estimulación leucocitaria como pueda ser una sepsis bacteriana. En algunos pacientes particularmente susceptibles, la presencia de antígenos bacterianos con características de «superantígeno» o la propia liberación enzimática de los PMN podría inducir a una respuesta autoinmunitaria con producción del co- rrespondiente autoanticuerpo ANCA 19. Ambos autoanticuerpos reconocen y se fijan al correspondiente antígeno lisosómico expresado en la superficie del PMN a través del fragmento Fab, mientras que el fragmento Fc de la inmunoglobulina ANCA se une con su correspondiente receptor en la superficie del neutrófilo 20, 21. La unión del ANCA con sus correspondientes antígenos inducen activación leucocitaria 22. La activación de los PMN por el ANCA ocurre in vitro cuando la unión del ANCA intacto o su fragmento F(ab')2 producen una ligazón cruzada de los antígenos correspondientes a la superficie celular 23. Estudios sobre la capacidad de los distintos isotipos de IgG para activar la «respiratory burst» de los PMN indican que esta capacidad parece limitarse a la IgG3 20, 24 del mismo modo que la IgG3 está asociada a fases activas de vasc u l i t i s 25. Es en esta circunstancia cuando en el contexto de la autoinmunidad el ANCA anti-MPO y anti-PR3 inicia un proceso de amplificación de la activación leucocitaria que podría tener lugar en pleno torrente 23 E. MIRAPEIX circulatorio o en su fase de contacto endotelial dando lugar a una activación leucocitaria prematura 1. El complejo antígeno-anticuerpo que se forma en la superficie del PMN es internalizado y como consecuencia de ello, esta célula inicia un proceso de gran estimulación debido al cual se sintetizan y liberan gran cantidad de enzimas lisosómicas y de radicales libres de O2 (ROS) con gran capacidad necrotizante y bactericida. Las enzimas liberados se combinan también con su correspondiente ANCA y particularmente el complejo c-ANCA-PR3 se hace insensible a la acción neutralizante de su inhibidor la a1AT prolongando sensiblemente su vida media 26. Existen dudas entre si el complejo c-ANCA-PR3 es activo o inactivo. En caso de permanecer activo podría contribuir al incremento de la actividad enzimática de la PR3. La liberación masiva de enzimas lisosómicas y la posible prolongación de su vida media al ser reconocidos por su correspondiente ANCA hacen que su capacidad destructiva se haya visto incrementada dando lugar al fenómeno de la necrosis 27. Aparte de su acción enzimática la PR3 puede ejercer otro mecanismo patogénico de forma indirecta demostrada in vitro y que consiste en su capacidad de unirse a la célula endotelial y estimular su producción de la linfoquina quimiotáctica IL8, la cual atraerá nuevos PMN al territorio inflamado amplificando ese proceso. La PR3 unida a la célula endotelial también puede ser reconocida por el anticuerpo c-ANCA e iniciar mecanismos de citotoxicidad celular mediada por complemento 14. La MPO también puede unirse in vitro a la célula endotelial, ser reconocida por el anticuerpo p-ANCA anti-MPO y mediar mecanismos citotóxicos del mismo modo que se ha descrito para la PR3 28. Existen también estudios in vitro que demuestran la capacidad del ANCA para estimular la capacidad citotóxica de los PMN activados frente a células end o t e l i a l e s 29. Los PMN activados, además de su capacidad necrotizante por liberación al medio de sus enzimas lisosómicas, poseen otros mecanismos de lesión tisular más directa al adherirse a la célula endotelial por la aparición o incremento de sus moléculas de adhesión, selectinas e integrinas. Una vez adheridos liberarán su contenido enzimático directamente sobre la superficie del endotelio contribuyendo directamente de una forma muy local a la necrosis vascular. En el riñón se ha demostrado la existencia de células productoras de citoquinas (TNF, IL1) identificadas como macrófagos o células epiteliales proliferadas in situ 30 que serán capaces de estimular PMN localmente y atraer PMN activados iniciándose la cadena de reacciones anteriormente descritas 24 en el territorio vascular glomerular o intersticial. Las biopsias renales de pacientes con vasculitis de Wegener presentan PMN activados y su número correlaciona con el grado de insuficiencia renal 31. La liberación local glomerular de ROS y enzimas lisosómicas producirá necrosis y verdaderas fracturas del capilar glomerular y de la cápsula de Bowman con la consiguiente extravasación de fibrina e invasión de fibroblastos y leucocitos periglomerulares que participarán en la formación de semilunas epiteliales en los casos de glomerulonefritis 32. PARTICIPACION DE LA INMUNIDAD CELULAR Existen datos directos e indirectos que implican a los fenómenos de inmunidad celular en la patogenia de las vasculitis y más concretamente en la formación de los granulomas en la GW. El patrón de subclase de IgG ANCA, principalmente IgG1 y IgG4, sugiere una estimulación crónica con respuesta celular tipo T 25. Se ha observado que la célula que predomina en la lesión granulomatosa es el linfocito CD4 33. También se ha demostrado que si enfrentamos in vitro linfocitos de un paciente afecto de granulomatosis de Wegener (GW) o poliangeítis microscópica (PAM) con antígeno PR3 o MPO purificado, éste es reconocido por el correspondiente receptor de antígeno de la célula CD4 y se produce una respuesta proliferativa linfocitaria semejante a la que se produce en otras enfermedades autoinmunes 34, 35. En los casos de GW que padecen una recaída mayor los niveles de receptor soluble de IL-2 están elevados indicando una situación de activación linfocitaria de células T 33. El hecho de que algunos pacientes con vasculitis particularmente severas hayan obtenido una respuesta favorable al ser tratados con inmunoterapia anticélulas T (ATG antiCD4) apoya junto con los datos precedentes el papel de la inmunidad celular en la patogénesis de las vasculitis 36. PARTICIPACION DE LA CELULA ENDOTELIAL (fig. 2) Modelo en tres fases de circulación leucocitaria en la inflamación Resulta interesante saber si el endotelio es un elemento pasivo en el proceso inflamatorio vasculítico o responde a los mediadores de la inflamación del modo descrito el llamado «modelo en tres fases» que condiciona y regula el tráfico normal de los leucocitos y de los PMN 37. En este mode- ANCA Y VASCULITIS Fig. 2.--Modelo en tres fases que regula el tráfico leucocitario normal. 1. Acción de las selectinas endoteliales que reconocen los carbohidratos y mucin-ligands de los leucocitos iniciando la primera fase de «rolling y tethering». 2. Segunda fase en la que la célula endotelial activada secreta quimoquinas que atraerán nuevos leucocitos y estimularán las integrinas de los leucocitos adheridos por las selectinas. 3. Tercera fase o de ahesión firme «sticking y migration» en las que las integrinas leucocitarias activadas por los factores quimiotácticos reconocen los ICAMS endoteliales, proporcionando la adherencia firme necesaria para su ulterior migración al espacio intersticial. En condiciones fisiológicas esta secuencia tendría lugar en el espacio postvénula. Durante la inlamación tendría lugar en el espacio vascular. lo se definen tres fases que se presentan de modo secuencial en la migración leucocitaria fisiológica a través de los vasos sanguíneos 38 que en condiciones normales se realiza a baja frecuencia regulando el tráfico fisiológico de los leucocitos. Esta secuencia se acelera y amplifica cuando se produce un fenómeno inflamatorio. En este contexto del fenómeno inflamatorio las células inmunocompetentes de la estirpe monocito/macrófago liberan las linfoquinas inflamatorias tipo IL1, TNF y IL4 que entre otras funciones están las de activar la célula endotelial, la cual expresará selectinas (fase 1), liberará quimoquinas (fase 2) y expresará moléculas de adhesión activadas del tipo superfamilia de las Ig (fase 3). Estas tres fases son consecutivas y cada una es condicional para la fase siguiente (fig. 2). En un primer episodio llamado de «rolling» los leucocitos se adhieren débilmente al endotelio y rue- dan sobre su superficie gracias al reconocimiento entre las selectinas endoteliales y los mucin-like receptores de los leucocitos. En esta primera fase ya se produce una concentración selectiva de las diferentes estirpes leucocitarias de acuerdo con las múltiples combinaciones posibles que pueden establecerse con las distintas moléculas de adhesión y sus contrarreceptores. La fase de ahesión por selectinas constituye un prerrequisito para los pasos siguientes de estimulación mediada por chemotractants y de ahesión por integrinas. En una segunda fase actúan los factores quimiotácticos liberados por la célula endotelial activada, los cuales, al mismo tiempo que pueden atraer más leucocitos hacia la zona donde son secretados, estimulan al leucocito adherido por las selectinas y logran que exprese y active sus moléculas de adhesión tipo integrinas. En la tercera fase, las integrinas leucocitarias activadas reconocerán a sus contrarreceptores endoteliales Ig superfa25 E. MIRAPEIX mily lográndose la adhesión firme entre el leucocito y el endotelio. Esta adhesión se realiza de modo intermitente, permitiendo el desplazamiento de los leucocitos a través de los espacios interendoteliales hacia el espacio intersticial. Dada la enorme multiplicidad de posibles combinaciones entre las diferentes moléculas de adhesión con sus contrareceptores estimulados a su vez por los distintos chemotractants, se piensa que los mecanismos de adhesión y transmigración leucocitaria en el capilar renal y pulmonar en las vasculitis pueden ser diferente del modelo fisiológico propuesto para la migración en la vénula postcapilar y explicar a su vez las diferentes expresiones territoriales de las distintas formas clínicas de vasculitis. Señales y receptores que intervienen en el tráfico leucocitario 39, 40 Selectinas. Las selectinas constituyen una familia de múltiples proteínas que tienen distintas funciones y que actúan como señales de tráfico frente a los leucocitos. La L-selectina se expresa en prácticamente todas las células leucocitarias circulantes. La P-selectina se acumula en gránulos preformados en las células endoteliales y en las plaquetas. En caso de inflamación y en respuesta a mediadores de la inflamación esta selectina se expresa en la superficie celular para ser reconocida por PMN y monocitos. La E-selectina se expresa fundamentalmente en la célula endotelial y su expresión está inducida por citoquinas inflamatorias tales como IL1, LPS o TNF. No está presente en el riñón normal pero se expresa «de novo» en el endotelio glomerular, en el epitelio parietal glomerular y tubular en las glomerulonefritis proliferativas y en la glomerulonefritis de la enfermedad de Wegener 39, 41, 42. Se ha sugerido que las selectinas tienen un coeficiente de asociación y disociación muy rápido que permitiría el efecto rolling 41. Carbohidratos y moléculas mucin-like. Son determinantes ricos en carbohidratos con ácido siálico que constituyen los contrarreceptores de las selectinas. Son distintos para cada uno o grupos de selectinas y están presentes en la superficie celular leucocitaria y son reconocida por la correspondiente selectina. Chemotractants. Las quimoquinas son citoquinas estructuralmente relacionadas entre sí que se secretan localmente en los lugares donde existe lesión tisular y que tienen como función principal el producir la atracción de los leucocitos y contribuir a la activación de los mismos. En la quimiotaxis las células se mueven en la dirección a la concentración creciente del quimiotractante. Existen más de 20 qui26 moquinas descritas que se clasifican en dos grupos. Las C-X-C o a quimoquinas actúan sobre los PMN, y las C-C o b quimoquinas sobre los monocitos o linfocitos. La C-X-C quimoquina más importante es la IL-8 que es específica para los PMN, y la C-C más importante es el MCP-1 para los monocitos. Existe una tercera población de quimoquinas denominadas C-quimoquinas o linphotactinas que estarán destinadas a la atracción de las células T 43. La mayoría de quimoquinas las secretan los monocitos estimulados y las células endoteliales activadas atrayendo los leucocitos que se moverán en dirección al gradiente de concentración de la quimoquina correspondiente. Las quimoquinas pueden además adherirse a superficies celulares por interacciones no covalentes y de este modo no diluirse en la circulación sanguínea 44. Una vez en contacto con la célula, las quimoquinas actúan activando las integrinas celulares gracias a la inducción de un cambio estructural. Cuando esta acción tiene lugar sobre los leucocitos circulantes éstos aumentan su adhesividad. Estudios realizados in vitro demuestran que la MCP-1 puede ser sintetizada por las células mesangiales, epitelio tubular proximal y células endoteliales. La interleuquina IL-8 puede ser secretada por las células mesangiales, epitelio tubular proximal, endoteliales y fibroblastos 43. La C-C quimoquina MCP1 está expresada en el riñón con vasculitis cerca de las células de estirpe monocítica CD14/CD68 37. Se ha observado que los monocitos están presentes en la proliferación epitelial de ciertas glomerulonefritis son capaces de secretar MCP-1 y por tanto contribuir a la proliferación epitelial 45. A la MCP-1 se le atribuye un papel importante en el origen del infiltrado intersticial en la nefritis intersticial alérgica y en la GN IgA ya que puede también ser sintetizada y secretada por las células endoteliales y por las células del epitelio tubular 46. Además de los monocitos la MCP-1 se ha demostrado que puede ser sintetizada in vitro por las células endoteliales activadas, lo cual hace pensar que esta célula también puede contribuir a la presencia de macrófagos en las glomerulonefritis humanas a través de la secreción de MCP-1 47. Del grupo de las C-X-C quimoquinas la mejor estudiada es la IL-8, que parece tener una especificidad para el polimorfonuclear. Exprimentos realizados in vitro demuestran que la IL-8 puede estar producida por la célula mesangial, epitelial y endotelial, así como por los fibroblastos renales. Bajo el estímulo del TNF la célula del epitelio cortical renal humano también es capaz de liberar IL-8 43. Receptores para chemotractants. Están presentes en PMN, monocitos y otros leucocitos participando ANCA Y VASCULITIS en múltiples funciones celulares. Los receptores más conocidos pueden agruparse en cuatro clases diferentes denominadas compartidos, específicos, promiscuos y codificados por virus 43. El receptor para la IL-8 (C-X-C) está presente en los PMN y existe una alta especificidad entre los chemotractants y sus correspondientes receptores 38. Integrinas. Tal como se ha comentado al hablar de las selectinas, las integrinas facilitan la adhesión firme y la inmovilización de los leucocitos a la superficie celular que expresa moléculas del tipo de la superfamilia de las inmunoglobulinas. Son glicoproteínas heterodiméricas con una cadena a y b. Por su naturaleza de activación temporal proporcionan carácter transitorio a su acción adherente y por lo tanto contribuyen a la adhesión y a la dehadhesión que permitirá la migración leucocitaria al espacio intersticial. Son activadas por las sustancias chemotractantes y el proceso de activación consiste fundamentalmente en un cambio conformacional de la molécula integrina. Las mejor conocidas son la LFA-1 que reacciona con el ICAM-1 de la célula endotelial y la VLA-1 que reacciona con el VCAM-1 de la célula endotelial activada. La interrelación entre LFA-1 y ICAM-1 se ha descrito como responsable del infiltrado intersticial en algunas glomerulonefritis experimentales y humanas 48, 49. En las zonas inflamadas de algunas glomerulonefritis y vasculitis se ha observado infiltración de linfocitos T y monocitos que expresan en su superficie la integrina VLA-4 junto con la presencia de linfoquinas tipo TNF y IL1 40. En la GNRP la molécula VLA-4 aparece expresada en las células tubulares del cortex renal y en las células que forman la semiluna glomerular 50. Miembros de la superfamilia de las inmunoglobulinas (Ig SF). Estas moléculas contienen una o más regiones estructuralmente muy parecidas a las inmunoglobulinas. El ICAM-1 está presente de forma natural en las células endoteliales de los grandes vasos, glomérulos y capilares peritubulares 39, 40, 51 y su expresión aumenta por acción de las citoquinas inflamatorias (IL1, TNF o gIF) 52 ya que éstas activan la célula endotelial. Reconocen la integrina LFA-1 de los leucocitos. En algunas glomerulonefritis y vasculitis el ICAM-1 está upregulado en el endotelio glomerular, en el mesangio y en el epitelio parietal glomerular 41. El VCAM-1 es una molécula que no se expresa en el endotelio en reposo 40 o se expresa débilmente en endotelio peritubular y en la célula epitelial parietal glomerular y tubular 39, 41. La activación endotelial hace que el VCAM-1 se exprese de novo o se incremente su expresión particularmente en las zonas inflamadas y necróticas 41. Reconocen la integrina VLA-1 de los leucocitos. ICAM-1 y VCAM-1 aparecen expresadas en la célula parietal glomerular en la mayor parte de las glomerulonefritis y por tanto se supone que pueden jugar un papel importante en la formación de la proliferación epitelial 32, 53. En los casos de vasculitis se produce un incremento de la expresión de ICAM-1 51 y expresión de novo de VCAM-1 en las zonas inflamadas y necróticas 54. En la GNRP y otras glomerulonefritis la molécula ICAM-1 y VCAM-1 aparece expresada en las células que forman la semiluna glomerular y en las células tubulares del cortex renal 40, 50, 51, 55, 56. De modo asociado se produce una infiltración de monocitos y linfocitos T que expresan VLA-4 en su superficie 40. También se ha identificado por distintos métodos la presencia de TNF y IL1 en el riñón vasculítico y en monocitos circulantes. ICAM-2 puede ser importante en el tráfico leucocitario en situación de reposo. Los experimentos realizados in vitro y los hallazgos histopatológicos en las distintas formas de vasculitis y glomerulonefritis hacen pensar que la interrelación entre el leucocito activado y la célula endotelial activada se realiza mediante el reconocimiento mutuo de sus moléculas de adhesión. Este reconocimiento se realizará de modo secuencial según el modelo en tres fases descrito anteriormente. INFLUENCIA DE LOS ANCA EN LA EXPRESION DE LAS MOLECULAS DE ADHESION Selectinas. La molécula ELAM-1 o E-selectina no se expresa en las células endoteliales (CE) en reposo. Si éstas se activan por la acción de las linfoquinas IL1, TNF o LPS, la E-selectina se expresa en la superficie de la CE para iniciar el reconocimiento leucocitario en su 1ª fase de rolling. El ANCA antiPR3 puede activar la CE in vitro e inducir la expresión de la E-selectina del mismo modo que las linfoquinas mencionadas. Esta inducción se haría gracias a que en el proceso de activación de la CE la PR3, normalmente presente aunque en pequeñas cantidades en el citoplasma de la célula endotelial, se expresa en su superficie pudiendo ser reconocida por el correspondiente anticuerpo ANCA 52. La capacidad de las linfoquinas y del ANCA de inducir la expresión de E-selectina en la superficie de la CE podría tener efectos sumatorios constituyendo el ANCA un elemento de amplificación de un proceso normalmente realizado por las linfoquinas. El PMN se activa por las mismas linfoquinas y su activación se amplifica por la acción del ANCA sobre los autoantígenos MPO o PR3 expresados en la superficie celular del PMN. Ambos fenómenos forman una combinación de gran capacidad inflama27 E. MIRAPEIX toria-necrotizante tal como se ha demostrado in vitro a través del mecanismo de citotoxicidad mediado por anticuerpos 52, 57. Además de la PR3, la CE y el PMN tienen otros antígenos de membrana que se expresan en común y que son reconocidos por el ANCA de pacientes con GNRP. Su función todavía no se conoce, pero podrían contribuir a la interacción entre endotelio y leucocito 58. Chemotractants. El C-ANCA, y en menor grado el P-ANCA, es capaz de incrementar la producción in vitro de MCP-1 de los monocitos en cultivo. Conociendo que en los granulomas el monocito libera MCP-1 para atraer nuevos monocitos al territorio granulomatoso, el ANCA actuaría como mecanismo amplificador del proceso de reclutamiento monocitario en los granulomas 59. Integrinas/Ig SF. La misma capacidad del ANCA anti PR3 de inducir expresión de E-selectina en la CE activada se ha demostrado para el VCAM-1 en la CE. Esta inducción se haría también gracias a que en el proceso de activación de la CE la PR3, normalmente presente, aunque en pequeñas cantidades, en el citoplasma de la célula endotelial se expresa en su superficie pudiendo ser reconocida por el correspondiente anticuerpo ANCA 60. Linfoquinas tipo TNF-a y ANCA actuarían concomitantemente y de forma complementaria en la inducción de la expresión de VCAM-1 en la célula endotelial. La aparición de VCAM-1 en la CE activada podría facilitar la transmigración de las células portadoras de su integrina correspondiente VLA-1, como son los monocitos y linfocitos CD4 memoria contribuyendo al origen inmunológico de este proceso. Todo este conjunto de datos, producto de experimentos realizados in vitro y que en conjunto tratan de explicar la acción patogenética del ANCA a través del reconocimiento entre anticuerpo y el correspondiente antígeno expresado en la superficie del PMN o de la célula endotelial, no tiene su correspondiente versión in vivo ya que en los tejidos afectados por la vasculitis no se detectan inmunoglobulinas fijadas en ninguna estirpe celular. Existen sin embargo experimentos in vitro que demuestran la capacidad del suero de pacientes con GW de reconocer antígenos glomerulares empleando células endoteliales y epiteliales en cultivo 61. En los distintos modelos experimentales que tratan de reproducir vasculitis en animales presensibilizando con antígeno PR3 o MPO con la consiguiente producción de anti-PR3 o anti-MPO, e inyectando posteriormente en la arteria renal el correspondiente antígeno y H2O2, se produciría el reconocimiento del ANCA con el antígeno que se ha fijado a la membrana basal glomerular gracias a la distinta carga electroestática. Este reconocimiento tendría lugar en 28 una primera fase de muy corta duración. Ello iría seguido de un aclaramiento rápido del inmuno complejo formado in situ y de una inflamación necrotizante acompañante debido a la intensa infiltración de PMN y macrófagos que liberan sus enzimas lisosómicas in situ 62. Si esta secuencia experimental constituye la explicación de los fenómenos que ocurren en la patología humana está aún por demostrar. PARTICIPACION DE LA CELULA DEL TUBULO PROXIMAL Las lesiones renales de los pacientes con vasculitis se caracterizan por la glomerulonefritis necrotizante con proliferación epitelial en forma de semiluna y por la existencia casi constante de infiltración intersticial de células mononucleadas tipo macrófagos y linfocitos junto con polimorfonucleares 63. Cada vez existe una mayor evidencia de que la célula del túbulo proximal (TEC) actúa como célula accesoria en la reacción inmunológica renal ya que bajo estímulos apropiados expresa antígenos MHC II, moléculas de adhesión ICAM-1 y VCAM-1, es capaz de secretar citoquinas tales como IL-1, TNF y MCP-1 64. También es capaz de procesar péptidos inmunogénicos de la sangre y del filtrado glomerular. De un modo semejante a la situación de la célula endotelial y de los PMN, la célula del túbulo proximal puede expresar PR3 si está bajo la influencia de citoquinas proinflamatorias. Probablemente la PR3 citoplasmática se desplaza a la superficie celular puesto que puede ser reconocida por el ANCA anti-PR3 y presentar in vitro una mayor expresión de ICAM-1 y de VCAM-1 65. El glomérulo y la célula TEC de los pacientes con vasculitis y glomerulonefritis extracapilar presenta una expresión de novo de VCAM-1 y una sobreexpresión de ICAM-1 42, 50, 51, 54, 56, asociada a la presencia de células mononucleadas 42. La interrelación de ANCA y TEC podría ser rel paso inicial para la migración de monocitos y células T hacia el tejido tubulointersticial 65. ASPECTOS GENETICOS HLA y vasculitis. La fuerte asociación entre ANCA y vasculitis constituye uno de los elementos que hace pensar en la participación de la autoinmunidad en la patogenia de esta enfermedad. La susceptibilidad a padecer una enfermedad autoinmune está fuertemente influida por los genes del complejo mayor de histocompatibilidad HLA. Es por ello que exista una inclinación a investigar si existe asociación entre al- ANCA Y VASCULITIS gunos de los antígenos de este sistema y una mayor inclinación a padecer la enfermedad. La información obtenida hasta el momento es altamente contradictoria. Se ha descrito una frecuencia aumentada del antígeno DR2 y granulomatosis de Wegener 66 y DR2, MT3 y alotipo BfF del complemento con GNRP 67, 68. Más tarde se describió una frecuencia aumentada de los antígenos DR4, DQw7 y vasculitis 69. Recientemente se ha descrito una frecuencia disminuida de los antígenos DR1, DR6 en la G de Wegener 70. Por último, en un artículo que pretende armonizar las anteriores discrepancias, se describe la ausencia de tales asociaciones o la existencia de asociaciones débiles en caso de existir alguna 71. Polimorfismos de la a1-antitripsina. La a1-antitripsina (a1-AT) es una proteína sintetizada por el hígado y los macrófagos 72 cuya función consiste en el bloqueo funcional de distintas proteasas séricas de entre las que destacamos la PR3. Su concentración sérica normal es de 1,3 g/l, pero parece que para que ejerza algunas de sus funciones conocidas sólo se precisan concentraciones de 0,3-0,5 g/l 15, 27. La concentración sérica de la a1-AT se eleva en los procesos inflamatorios. La concentración plasmática de a1-AT está controlada por un conjunto de más de 90 variables alélicas llamadas Pi. Dentro de este polimorfismo la forma más común es la PiM, que se asocia a niveles séricos normales de a1-AT. Existen dos variables patológicas clínicamente importantes que son la PiZ y la PiS. Los pacientes que son PiZ homocigotos (PiZZ) presentan un 15% de concentración sérica de a1-AT respecto a los que son PiM, manifestando una mayor propensión a enfermedad pulmonar y hepática. Los pacientes que son PiS homocigotos (PiSS) presentan niveles séricos de a1-AT disminuidos pero sólo en un 60-80% y no presentan predisposición a enfermedad pulmonar o hepática. Los pacientes heterocigotos PiSZ presentan disminuciones de concentración sérica de a1-AT del 38% con predisposición manifiesta a padecer enfermedad pulmonar y hepática 72. Existen distintas asociaciones entre formas alélicas Pi y formas de vasculitis. La forma alélica PiZ está presente en el 20% de pacientes con granulomatosis de Wegener, mientras que en la población normal es del 4,7%. Los pacientes con GW y ANCA que son portadores del alelo PiZ presentan formas más severas de vasculitis y con una mayor mortalidad 72. También se han descrito asociaciones entre formas alélicas y tipos de ANCA. El c-ANCA presenta una mayor asociación con la forma PiZ y el p-ANCA se asocia con el alelo PiS 72. El alelo Z es más frecuente en los países nórdicos, donde parece haber mayor frecuencia de G de Wegener que de poliangeítis microscópica, mientras que el alelo S es más frecuente en los países meridionales donde esta última patología parece ser más frecuente 72 (tabla I). Tabla I. Asociaciones descritas entre los distintos alelos de la a1-AT y algunos aspectos clínicos de las vasculitis. Alelos Alelo PiZ Asociaciones Niveles bajos de a1-AT Mayor riesgo de enfermedad Se asocia a c-ANCA y G de Wegener Es más frecuente en países nórdicos Niveles intermedios de a1-AT Riesgo de enfermedad moderado Se asocia a p-ANCA y PAM Es más frecuente en países meridionales Alelo PiS Según distintos autores, un desequilibrio en la relación proteasa/antiproteasa producido por una baja concentración de a1-AT, sea por alteraciones genéticas que conducen a un déficit de síntesis de la misma o por una deficiencia adquirida, podrían tener un papel facilitador de la enfermedad vasculítica en sus diferentes formas de expresión 19, 73. RESUMEN El hecho de que no se observen inmunoglobulinas o factores del complemento en los tejidos afectados por la lesión vasculítica cuestiona el papel patogenético directo de una inmunoglobulina como es el ANCA. Tampoco ha sido posible hasta hoy diseñar un modelo experimental animal que reproduzca fielmente el proceso de las vasculitis humanas. Existen por otro lado datos incuestionables que asocian la presencia sérica de los ANCA con las vasculitis de vaso pequeño que hacen difícil pensar que dicha asociación es mera coincidencia o que el ANCA es un epifenómeno. Los datos experimentales que se han expuesto llevan a pensar que el ANCA contribuye a la patogenia de las vasculitis actuando como un elemento amplificador de fenómenos biológicos que están normalmente presentes. Por tanto el ANCA podría tener un papel amplificador de la activación leucocitaria que se produce durante la inflamación. El ANCA podría también tener un papel amplificador de la expresión endotelial de las moléculas de adhesión que se produce durante la inflamación. Las alteraciones genéticas de la alfa1 antitripsina podrían tener un 29 E. MIRAPEIX papel facilitador de la enfermedad vasculítica en sus distintas formas de expresión. BIBLIOGRAFIA 1. Jennette JC: Pathogenic potential of anti-neutrophil cytoplasmic autoantibodies. Lab Invest 70: 135-137, 1994. 2. Mirapeix E: ANCA: Vasculitis y glomerulonefritis. Medicine 61: 55-64, 1994. 3. Cid MC: New developments in the pathogenesis of systemic vasculitis. Current Opinion in Rheumathology 8: 1-11, 1996. 4. Kallenberg CGM, Cohen Tervaert JW, Van der Woude FJ, Goldschmeding R, Von dem Borne AE, Weening J: Autoimmunity to lisosomal enzymes: new clues to vasculitis and glomerulonephritis? Immunolgy today 12: 61-64, 1991. 5. Kallenberg CGM, Brower E, Weening JW, Cohen Tervaert JW: Antineutrophil cytoplasmic antibodies: Current diagnostic and pathophysiological potential. Kidney Int 46: 1-15, 1993. 6. Fauci AS, Maynes BF, Katz P y cols.: Wegener's granulomatosis: prospective clinical and therapeutic experience with 85 patients for 21 years. Ann Intern Med 98: 76-85, 1983. 7. Pinching AJ, Lockwood CM, Pussell BA y cols.: Wegener's granulomatosis: observations on 18 patients with severe renal disease. Q J Med 52: 435-460, 1983. 8. Stegeman CA, Tervaert JW, Sluiter WJ, Manson WL, de-Jong PE, Kallenberg CG: Association of nasal carriage of Staphilococcus aureus and higher relapse rates in Wegener granulomatosis. Ann Intern Med 120: 12-17, 1994. 9. Stegeman CA, Tervaert JW, de-Jong PE, Kallenberg CG: Trimethoprim-sulfasmethoxazole (co-trimoxazole) for the prevention of relapses of Wegener's granulomatosis. N Engl J Med 335: 16-20, 1996. 10. Falk RJ, Hogan S, Carey TS, Jennette JC: The clinical course of patients with antineutrophil cytoplsmic autoantibody associated glomerulonephritis and systemic vasculitis. Ann Intern Med 113: 656-663, 1990. 11. Arimura Y, Misoshima S, Kamiya Y, Tanaka U, Nakabayashi K, Kitamoto K, Nagasawa T, Sasaki T, Suzuki K: Serum myeloperoxidase and serum cytokines in anti-myeloperoxidase antibody-associated glomerulonephritis. Clinical Nephrol 40: 256-264, 1993. 12. McKane WS, Velasco N, Farrington K: ANCA-positive crescentic glomerulonephritis in chronic bronchiectasis. Nephrol Dial Transplant 10: 1447-1450, 1995. 13. Irvine AD, Bruce IN, Walsh M, Burrows D, Handley J: Dermatological presentation of disease associated with antineutrophil cytoplasmic antibodies: a report of two contrasting cases and a review of the literature. Brit J Dermat 134: 924928, 1996. 14. Berger SP, Seelen MA, Hiemstra PS, Gerritsma JS, Heemskerk E, Van der Woude FJ, Daha MR: Proteinase 3, the major autoantigen of wegener's granulomatosis, enhances IL-8 production by endothelial cells in vitro. J Am Soc Nephrol 7: 694-701, 1996. 15. Segelmark M, Elzouki AN, Wieslander J, Eriksson S: The PiZ gene of a1-antitripsin as a determinant of outcome in PR3ANCA-positive vasculitis. Kidney Int 48: 844-850, 1995. 16. Falk RJ, Terrell RS, Charles LA, Jennette JCh: Anti-neutrophil cytoplasmic autoantibodies induce neutrophils to degranulate and produce oxigen radicals in vitro. Proc Natl Acad Sci 87: 4115-4119, 1990. 17. Csernok E, Lüdemann J, Gross WL, Bainton DF: Ultrastructural localization of Proteinase 3, the target antigen of anticytoplasmic autoantibodies circulating in Wegener´s granulomatosis. Am J Path 137: 1113-1120, 1990. 18. Csernok E, Ernst M, Schmitt W, Bainton DF, Gross WL: Activated neutrophils express proteinase 3 on their plasma membrane in vitro and in vivo. Clin Exp Immunol 95: 244-250, 1994. 19. Hagen EC: Antineutrophil cytoplasmic antibodies and systemic vasculitis. Tesis doctoral. Bergdrukkerij, Amersfoort, 174175, 1997. 20. Mulder AHL, Heeringa P, Brower E, Limburg PC, Kallenberg CGM: Activation of granulocytes by anti-neutrophil cytoplasmic antiodies (ANCA): a FcgRII-dependent process. Clin Exp Immunol 98: 270-271, 1994. 21. Reumaux D, Vossebeld P, Roos D, Verhoeven A: Effect of tumor necrosis factor-induced integrin activation on Fcgreceptor II - mediated signal transduction: relevance for activation of neutrophils by anti-proteinase 3 or anti-myeloperoxidase antibodies. Blood 86: 3189-3195, 1995. 22. Keogan MT, Esnault VLM, Green AJ, Lockwood CM, Brown DL: Activation of normal neutrophils by anti-neutrophil cytoplasm antibodies. Clin Exp Immunol 90: 228-234, 1992. 23. Kettritz R, Jennette JCH, Falk RJ: Crosslinking of ANCA-antigens stimulates superoxide release by human neutrophils. J Am Soc Nephrol 8: 386-394, 1997. 24. Mulder AHI, Stegeman CA, Kallenberg CGM: Activation of granulocytes by anti-neutrophil cytoplasmic antibodies (ANCA) in Wegener's granulomatosis: a predominant role for the IgG3 subclass of ANCA. Clin Exp Immunol 101: 227232, 1995. 25. Jayne DR, Weetman AP, Lockwood CM: IgG subclas distribution of autoantibodies to neutrophil cytoplasmic antigen in systemic vasculitis. Clin Exp Immunol 84: 476-481, 1991. 26. Dolman KM, Stegeman CA, Van de Wiel BA, Hack CE, Von dem Borne AE, Kallenberg CG, Goldschmeding R: Relevance of classic anti-neutrophil cytoplsmic autoantibody (cANCA) mediated inhibition of proteinase 3-a1-antitripsis complexation to disease activity in Wegener's granulomatosis. Clin Exp Immunol 93: 405-410, 1993. 27. Daouk GH, Palsson R, Arnaout MA: Inhibition of proteinase 3 by ANCA and its correlation with disease activity in Wegener 's granulomatosis. Kidney Int 47: 1528-1536, 1995. 28. Vargunam M, Adu D, Taylor CM, Michel J, Richards N, Neuberger J, Thompson RA: Endothelium myeloperoxidase-antimyeloperoxidase interaction in vasculitis. Nephrol Dial Transplant 7: 1077-1081, 1992. 29. Ewert BH, Jennette JC, Falk RJ: Anti-mieloperoxidase antibodies stimulate neutrophils to damage human endothelial cells. Kidney Int 41: 375-383, 1992. 30. Norhona IL, Krüger C, Andrassy K, Ritz E, Waldherr R: In situ production of TNF-a, IL-1b and IL-2R in ANCA positive glomerulonephritis. Kidney Int 43: 682-692, 1993. 31. Brouwer E, Huitema MG, Mulder L, Heeringa P, Van Goor H, Cohen Tervaert JW, Weening JJ, Kallenberg CGM: Neutrophil activation in vitro and in vivo in Wegener's granulomatosis. Kidney Int 45: 1120-1131, 1994. 32. Atkins RC, Nikolic-Paterson DJ, Song Q, Lan HY: Modulators of crescentic glomerulonephritis. J Amer Soc Nephrol 7: 2271-2278, 1996. 33. Stegeman CA, Cohen Tervaert JW, Huitema MG, Kallenberg CGM: Serum markers of T cell activation in relapses of Wegener 's granulomatosis. Clin Exp Immunol 91: 415-420, 1993. 34. Rasmussen N, Petersen J: Cellular immune responses and pathogenesis in c-ANCA positive vasculitides. J Autoimmunity 6: 227-236, 1993. 35. Griffith ME, Coulthart A, Pusey CD: T cell responses to myeloperoxidase (MPO) and proteinase 3 (PR3) in patients with systemic vasculitis. Clin Exp Immunol 103: 253-258, 1996. 30 ANCA Y VASCULITIS 36. Lockwood CM, Thiru S, Issacs J, Waldmann H: Long term remission of intractable systemic vasculitis with monoclonal antibody therapy. Lancet 341: 1620-1622, 1993. 37. Savage CO: The interaction of endothelial cells with inflamatory cells in vasculitis. Sarcoidosis vasculitis and diffuse lung diseases. ISSN 13: 214-216, 1996. 38. Springer TA: Traffic signals for lymphocyte recirculation and leukocyte emigration: the multistep paradigm. Cell 76: 301314, 1994. 39. Brady HR: Leucocyte adhesion molecules. Kidney Int 45: 1285-1300, 1994. 40. Dal Canton A: Adhesion molecules and renal disease. Kidney Int 48: 1687-1696. 41. Bruijn JA, Dinklo JCM: Distinct patterns of expression of intercellular adhesion molecule-1, vascular cell adhesion molecule-1, and endothelial-leukocyte adhesion molecule-1 in renal disease. Lab Invest 69: 329-335, 1993. 42. Roy-Chaudhury P, Wu B, King G, Campbell M, Macleod AM, Haites EN, Simpson JG, Power DA: Adhesion molecules interactions in humans glomerulonephritis: importance of the tubulointerstitium. Kidney Int 49: 127-134, 1996. 43. Schlöndorff D, Nelson PJ, Luckow B, Banas B: Chemokines and renal disease. Kidney Int 51: 610-621, 1997. 44. Furie MR, Randolph GJ: Chemokines and tissue injury. Amer J Path 146: 1287-1301, 1995. 45. Rovin BH, Rumanick M, Tan L, Dickerson J: Glomerular expression of monocyte chemotracrant protein-1 in experimental and human glomerulonephritis. Lab Invest 71: 536-542, 1994. 46. Grandaliano G, Gesualdo L, Ranieri E, Monno R, Montinaro V, Marra F, Schena FP: Monocyte chemotactic peptide-1 expression 1 in acute and chronic human nephritides: a pathogenetic role in interstitial monocytes recruitment. J Am Soc Nephrol 7: 906-913, 1996. 47. Kakizaki Y, Waga S, Sugimoto K, Tanaka H, Nukii K, Takeya M, Yoshimura T, Yokoyama M: Production of monocyte chemotractant protein-1 by bovine glomerular endothelial cells. Kidney Int 48: 1886-1874, 1995. 48. Hill PA, Ln HY, Nikolic-Paterson DJ, Atkins RC: ICAM-1 directs migration and localization of interstitial leukocytes in experimental glomerulonephritis. Kidney Int 45: 32-42, 1994. 49. Hill PA, Lan HY, Nikolic-Paterson DJ, Atkins RC: The ICAM1/LFA-1 interaction in glomerular leukocity accumulation in anti-GBM glomerulonephritis. Kidney Int 45: 700-708, 1994. 50. Baraldi A, Zambruno G, Furci L, Ballestri M, Tombesi A, Ottani D, Lucchi L, Lusvarghi E: b1 and b3 integrin upregulation in rapidly glomerulonephritis. Nephrol Dial Transplant 10: 1155-1161, 1995. 51. Muller GA, Markovic-Lipovski J, Muller CA: Intercellular adhesion molecule-1 expression in human kidneys with glomerulonephritis. Clin Nephrol 36: 203-208, 1991. 52. Mayet WJ, Buschenfelde HM: Antibodies to proteinase 3 increase adhesion of neutrophils to human endothelial cells. Clin Exp Immunol 94: 440-446, 1993. 53. Nikolic-Paterson DJ, Main IW, Lan HY, Hill PA, Atkins RC: Adhesion molecules in glomerulonephritis. Springer Semin Immunopathol 16: 3-32, 1994. 54. Rastaldi MP, Ferrario F, Tunesi S, Yang LY, D'Amico G: Intraglomerular and interstitial leukocyte infiltration, adhesion molecules and interleukin-1a expression in 15 cases of antineutrophil cytoplasmic autoantibody-associated renal vasculitis. Amer J Kid Dis 27: 48-57, 1996. 55. Seron D, Cameron JS, Haskard DO: Expresion of VCAM-1 in the normal and diseased kidney. Nephrol Dial Transplant 6: 917-922, 1991. 56. Wuthrich RP: Cell adhesion molecules and inflamatory renal diseases. Neprhol Dial Transplant 9: 1063-1065, 1994. 57. Savage COS, Pottinger BE, Gaskin G, Pussey CD, Pearson JD: Autoantibodies developing to myeloperoxidase and PR-3 in systemic vasculitis stimulate neutrphill cytotoxicity toward cultured endothelial cells. Am J Pathol 141: 335-342, 1992. 58. Kain R, Matsui K, Exner M, Binder S, Schaffner G, Sommer EM, Kerjaschki DJ: A novel class of autoantigens of autoneutrophil cytoplsmic antibodies in necrotizing and crescentic glomerulonephritis: the lysosomal membrane glycoprotein h-lamp-2 in neutrophil granulocytes and a related membrane protein in glomerular endothelial cells. J Exp Med 181: 585-597, 1995. 59. Casselman GL, Kilgore KS, Miller BF, Warren JS: Antibodies to neutrophil cytoplasmic antigens induce monocyte chemottractant protein-1 secretion from human monocytes. J Lab Clin Med 126: 495-502, 1995. 60. Mayet WJ, Schwarting A, Orth T, Duchmann R, Buschenfelde HM: Antibodies to proteinase 3 mediate expression of vascular cell adhesion molecule-1 (VCAM-1). Clin Exp Immunol 103: 259-267, 1996. 61. Abbott F, Jones S, Lockwood CM, Rees A: Autoantibodies to glomerular antigens in patients with Wegener's granulomatosis. Nephrol Dial Transplant 4: 1-8, 1989. 62. Kallenberg CGM, Brower E, Mulder CA, Stegeman JJ, Weening JW, Cohen Tervaert JW: ANCA-pathophysiology revisited. Clin Exp Immunol 100: 1-3, 1995. 63. Ferrario F, Castiglione A, Colasanti G y cols.: The detection of human monocytes in human glomerulonephritis. Kidney Int 28: 513-519, 1985. 64. Tesch GH, Yang N, Yu H, Lan Y, Foti R, Chadban SJ, Atkins RC, Nikolic-Paterson DJ: Intrinsic renal cells are the mayor source of interleukin-1b synthesis in normal and diseased rat kidney. Nephrol Dial Transplant 12: 1109-1115, 1997. 65. Schwarting A, Schlaak JF, Wandel E, Meyer KH, Mayet WJ: Human renal tubular epithelial cells as target cells for antibodies to proteinase 3 (c-ANCA). Nephrol Dial Transplant 12: 916-923, 1997. 66. Elkon KB, Sutherland DC, Rees AJ, Huges GRV, Batchelor JR: HLA-antigen frequencies in systemic vasculitis. Increase in HLA-DR2 in Wegener's granulomatosis. Arthr Rheum 26: 102-105, 1983. 67. Muller GA, Gebhardt M, Kompf J, Baldwin WM: Association between rapidly progressive glomerulonephritis and the properdin factor BfF and different HLA-D region products. Kidney Int 25: 115-118,1984. 68. Rees AJ: Immunogenetics of renal disease, en Immunological renal diseases 117-118, cap. 5, Neilson EG, Couser WG editores. Lippincott-Raven Editores, Philadelfia-New York, 1997. 69. Spencer JW, Burns A, Gaskin G, Pusey ChD, Rees AJ: HLA class II specificitie in vasculitis with antibodies to neutrphil cytoplasmic antigens. Kidney Int 41: 1059-1063, 1992. 70. Hagen EC, Stegeman CA, D'Amaro J, Schreuder GMT, Lems SPM, Cohen Tervaert JW, Jong GMT, Hene RJ, Kallenberg CGM, Daha MR, Van der Woude: Decreased frequency of HLA-DR13, DR6 in Wegener's granulomatosis. Kidney Int 48: 801-805, 1995. 71. Zhang L, Jayne DRW, Zhao MH, Lockwood CM, Oliveira DBG: Distribution of MHC class II alleles in primary systemic vasculitis. Kidney Int 47: 294-298, 1995. 72. Griffith ME, Lovegrove JU, Gaskin G, Whitehouse DB, Pusey CD: C-antineutrophil cytoplsmic antibody positivity in vasculitis patients is associated with Z allele of alpha-1-antitripsin, and P-antineutrophil cytoplasmic antibody with the S allele. Nephrol Dial Transplant 11: 438-443, 1996(b). 73. Esnault VLM: ANCA-positive vasculitis and alpha 1-antitrypsin deficiency: could free ANCA antigens released by neutrophils mediate vasculitic lesions? Nephrol Dial Transplant 12: 249-251, 1997. 31