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TAC ofrece ventajas sobre CsA en términos de una mejor función del injerto y de menores tasas de rechazo agudo<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0150"><span class="elsevierStyleSup">1,2</span></a>, pero se asocia a una mayor incidencia de diabetes mellitus postrasplante (DMPT)<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0160"><span class="elsevierStyleSup">3</span></a>. La incidencia de DMPT oscila entre el 15 y el 25%<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0165"><span class="elsevierStyleSup">4-6</span></a> y está asociada a mayores tasas de enfermedad cardiovascular y a un incremento en los costes sanitarios<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0160"><span class="elsevierStyleSup">3,7,8</span></a>. Con esto, el estudio de la DMPT inducida por TAC es relevante para establecer estrategias preventivas y terapéuticas tempranas que reduzcan sus consecuencias en esta población.</p><p id="par0010" class="elsevierStylePara elsevierViewall">De acuerdo con las guías actuales<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0160"><span class="elsevierStyleSup">3,9</span></a>, la DMPT está considerada un <span class="elsevierStyleItalic">fait accompli</span> y su tratamiento sigue las pautas terapéuticas de la diabetes tipo 2: antidiabéticos orales y/o insulina<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0190"><span class="elsevierStyleSup">9</span></a>. Sin embargo, raramente se actúa sobre el compuesto que más frecuentemente produce DMPT: el TAC, a pesar de que la CsA tiene un menor efecto diabetógeno que este<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0160"><span class="elsevierStyleSup">3,8,9</span></a>. El cambio de TAC por CsA para la reversión de DMPT rara vez ha sido propuesto. En un estudio retrospectivo de 34 casos de DMPT, Ghisdal et al.<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0195"><span class="elsevierStyleSup">10</span></a> demostraron unas tasas de remisión del 42% un año después del cambio de TAC a CsA, comparado con el 0% en el grupo control que se mantuvo con TAC. Sin embargo, hasta donde conocemos, no se ha realizado ningún estudio con modelos animales para establecer los mecanismos por los que el cambio de TAC a CsA pudiera ser una opción terapéutica en el tratamiento de la DMPT.</p><p id="par0015" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Nuestro grupo ha investigado previamente el efecto de los ICN en la homeostasis de la glucosa y en la célula<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>β en animales tanto con resistencia a la insulina como sin ella<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0200"><span class="elsevierStyleSup">11</span></a>. En este modelo, los ICN solo inducían diabetes en animales insulinorresistentes, y TAC inducía más diabetes que CsA (100% vs. 40%). Además, los animales con CsA presentaban alteraciones menos severas en la homeostasis de la glucosa según los test de tolerancia intraperitoneal a la glucosa como en las glucemias en ayunas. Estos hechos se pueden explicar por una menor reducción de la proliferación de la célula<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>β y de la expresión del gen de la insulina con CsA que con TAC<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0200"><span class="elsevierStyleSup">11</span></a>. Con estos datos, el objetivo de este estudio es investigar si el cambio de TAC a CsA en animales insulinorresistentes con diabetes inducida por TAC puede mejorar la homeostasis de la glucosa a través de la inducción de cambios en las tasas de proliferación y apoptosis de la célula<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>β y la expresión del gen de la insulina.</p></span><span id="sec0010" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0070">Material y métodos</span><span id="sec0015" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0075">Animales</span><p id="par0020" class="elsevierStylePara elsevierViewall">En un estudio previo<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0200"><span class="elsevierStyleSup">11</span></a> investigamos el efecto de los ICN sobre la homeostasis de la glucosa en animales tanto resistentes como sensibles a la insulina, a saber, ratas Zucker obesas (RZO) y delgadas (RZL). Las RZO tienen una mutación homocigótica en el receptor de la leptina (fa/fa)<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0205"><span class="elsevierStyleSup">12,13</span></a> que como resultado produce hiperfagia, obesidad, hiperlipidemia y resistencia a la insulina severa<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0215"><span class="elsevierStyleSup">14,15</span></a>. Las RZO, en condiciones normales, son capaces de mantener la euglucemia gracias a una elevada proliferación de las células<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>β y a una hipersecreción de insulina<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0225"><span class="elsevierStyleSup">16</span></a>. Llama la atención el hecho de que los ICN solo inducen diabetes cuando son administrados a animales con resistencia a la insulina, o sea, a las RZO y no a las RZL<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0200"><span class="elsevierStyleSup">11</span></a>. Con estos datos, para el presente trabajo solo hemos realizado el estudio con las RZO.</p><p id="par0025" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Empleamos animales de entre 4 y 6<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>semanas de edad, con un peso de 200<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>±<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>50<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>g (Charles-River, Francia). Fueron estabulados en jaulas adecuadas, a 22<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>°C, con un ciclo de luz-oscuridad de 12<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>h y alimentadas con agua y comida en pellet ad libitum. El comité ético del Hospital Universitario de Canarias aprobó el experimento.</p></span><span id="sec0020" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0080">Diseño experimental</span><p id="par0030" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Basado en un estudio previo de nuestro grupo<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0200"><span class="elsevierStyleSup">11</span></a>, inducimos la diabetes por TAC en animales obesos y luego reemplazamos el TAC por CsA. Para ello tratamos un grupo de RZO (n<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>44) con TAC durante 11<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días para inducir la diabetes, y posteriormente, a día 12, los animales fueron divididos en 2 subgrupos: a)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>TAC-día12 (grupo de referencia), formado por 22 animales que fueron sometidos a un test de tolerancia intraperitoneal a la glucosa (TTIPG) y luego sacrificados, y b)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>TAC-CsA, formado por 22 animales a los que el día<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>12 de tratamiento se les sustituyó el TAC por CsA durante 5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días, en el día 17 los animales se sometieron a un TTIPG y luego fueron sacrificados. Como grupo control, 45 animales recibieron el vehículo (PBS) durante 12<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días; a 23 de ellos se les realizó el TTIPG y fueron sacrificados a día<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>12, y a 22 se les realizó el TTIPG a día<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>17 y luego fueron sacrificados (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0005">fig. 1</a>).</p><elsevierMultimedia ident="fig0005"></elsevierMultimedia><p id="par0035" class="elsevierStylePara elsevierViewall">En nuestro estudio previo<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0200"><span class="elsevierStyleSup">11</span></a> todos los animales mostraron diabetes con hiperglucemia severa tras 12<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días con TAC, lo que fue revertido con la retirada del fármaco. Además, algunos animales murieron durante el TTIPG a día<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>12<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0200"><span class="elsevierStyleSup">11</span></a> debido a una hiperglucemia severa. De este modo, para el presente estudio consideramos que los animales tratados con TAC durante 12<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días tenían ya una diabetes establecida, y por esto no prolongamos el tratamiento con TAC durante 17<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días. Para determinar la duración del tratamiento con CsA tras el cambio (TAC-CsA), realizamos análisis preliminares en un subgrupo de animales (n<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>5) en los cuales medimos diariamente los niveles de glucosa en ayunas tras el cambio a CsA. Todos los animales mostraron valores normales de glucosa (<<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>126<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/dl) el quinto día tras el cambio a CsA; por tanto, decidimos realizar el estudio de la conversión del fármaco a los 5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días de haberse realizado el cambio a CsA.</p><p id="par0040" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los animales tratados con TAC recibieron una inyección intraperitoneal diaria de TAC (0,3<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/kg/día), y aquellos a los que se les realizó el cambio a CsA recibieron 2,5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/kg/día. Las dosis de TAC (0,3<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/kg/día) y CsA (2,5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/kg/día) empleadas fueron determinadas en experimentos previos<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0200"><span class="elsevierStyleSup">11</span></a> para obtener los niveles plasmáticos similares a los empleados en la práctica clínica tanto para CsA (200-250<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>ng/ml) como para TAC (8-10 ng/ml).</p><p id="par0045" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los animales se pesaron diariamente y los niveles de glucosa en ayunas se midieron los días 12, 14 y 17. El día 12 del grupo TAC-d12 (n<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>20) y el día 17 del grupo TAC-CsA (n<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>15), los animales fueron sometidos a un TTIPG con glucosa (2<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>g/kg) y los niveles de glucosa e insulina se midieron a 0, 30, 60 y 120<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>min. Los animales con PBS también fueron sometidos al TTIPG los días 12 y 17. Todos los animales fueron sacrificados con una inyección intraperitoneal de pentobarbital sódico (50<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/kg).</p><p id="par0050" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El día 12 para los grupos PBS y TAC-d12, así como el día 17 para PBS y TAC-CsA, los páncreas de 10 animales por grupo fueron extraídos para los análisis inmunohistoquímicos y morfométricos. Los páncreas de otros 10 animales de cada grupo fueron extraídos para los análisis de expresión génica de la insulina.</p><p id="par0055" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Muestras de suero recogidas de la aorta abdominal fueron obtenidas para medir los niveles de insulina y los parámetros bioquímicos. Las determinaciones bioquímicas se llevaron a cabo en el laboratorio central del Hospital Universitario de Canarias.</p></span><span id="sec0025" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0085">Definiciones</span><p id="par0060" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Diabetes: glucemia en ayunas ≥<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>126<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/dl o ><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>200<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/dl a los 120<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>min del TTIPG<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0190"><span class="elsevierStyleSup">9</span></a>. Prediabetes: glucemia anómala en ayunas: glucosa en ayunas ≥<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>100 a 125<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/dl o intolerancia a la glucosa: ≥<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>140 a 199<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/dl a 120<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>min del TTIPG<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0190"><span class="elsevierStyleSup">9</span></a>.</p></span><span id="sec0030" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0090">Análisis morfométricos e inmunohistoquímicos</span><p id="par0065" class="elsevierStylePara elsevierViewall">En 10 RZO por grupo de tratamiento a día<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>17, los páncreas fueron extraídos y fijados durante 24<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>h en paraformaldehído al 4% y posteriormente incluidos en parafina. Se realizaron secciones seriadas de 3<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>μm de grosor y se montaron en portaobjetos. Para los análisis morfométricos, los páncreas fueron teñidos con suero antiinsulina de cerdo de guinea y revelado con métodos inmunológicos basados en la biotina-estreptavidina. Se determinó el número de islotes y el área relativa de los mismos en base al área total de páncreas.</p><p id="par0070" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La proliferación de la célula<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>β se midió usando el método de incorporación de bromodeoxiuridina (BrdU) (Roche, Suiza). A los animales se les inyectó BrdU (100<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/kg) 8<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>h antes del sacrificio. Los páncreas fueron extraídos y procesados como se describió previamente. Las secciones histológicas fueron teñidas con anticuerpos para BrdU e insulina. La proliferación se midió como una estimación del número de células positivas para BrdU en base al número de células positivas para la insulina. Los niveles de apoptosis se midieron con la técnica del TUNEL, llevada a cabo de acuerdo a las instrucciones del fabricante (Cell Death detection kit, POD) (Roche, Suiza). La estimación de células positivas en TUNEL se ajustó al área positiva para insulina. Todas las imágenes fueron tomadas con una cámara Olympus DP72 (Olympus, Tokyo, Japón) acoplada al microscopio Olympus DX41 (Olympus, Tokyo, Japón) y posteriormente analizadas usando el programa ImageJ <span class="elsevierStyleItalic">(National Institute of Health)</span>.</p></span><span id="sec0035" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0095">Extracción del ácido ribonucleico</span><p id="par0075" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los islotes de los animales restantes (n<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>10 por tratamiento) fueron aislados de los páncreas mediante digestión con colagenasa<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0230"><span class="elsevierStyleSup">17</span></a>. Los islotes usados para el aislamiento de ARN fueron rápidamente congelados en solución<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>D con tiocianato de guanidio. El ARN total se obtuvo por el método de Chomczynski<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0235"><span class="elsevierStyleSup">18</span></a>. Determinamos la pureza y la concentración del ARN con Nano-drop 2000 (Thermo-Fisher, Boston, MA, EE.<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>UU.).</p></span><span id="sec0040" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0100">Reacción en cadena de la polimerasa en tiempo real</span><p id="par0080" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La cuantificación de la abundancia relativa del ARNm de <span class="elsevierStyleItalic">Ins2</span> se llevó a cabo mediante PCR cuantitativa (qPCR) usando SYBR green como método de detección. El ARN total de la muestra fue retrotranscrito usando un kit de síntesis de ADNc (Promega, Madison, WI, EE.<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>UU.) y el ADNc de <span class="elsevierStyleItalic">Ins2</span> fue amplificado usando cebadores específicos. La secuencia de los oligonucleótidos empleados fue: 5’-TCATCCTCTGGGAGCCCCGC-3’ (cebador con sentido) y 5’-GTTGCAGTAGTTCTCCAGTTGGT-3’ (cebador anti sentido). El incremento de la fluorescencia durante la reacción de PCR fue detectado con el sistema iQ5 (Bio-Rad, Hércules, CA, EE.<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>UU.) y la expresión génica fue normalizada con los genes referencia beta-actina y SDHA. Los datos fueron analizados con el programa qBASE<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0240"><span class="elsevierStyleSup">19</span></a>.</p></span><span id="sec0045" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0105">Análisis estadísticos</span><p id="par0085" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Las variables continuas son descritas como media y desviación estándar (DE) o mediana y rango intercuartílico cuando es apropiado, las variables dicotómicas se representan con la N y el %. Los grupos fueron comparados usando el test no paramétrico de Kruskall-Wallis y el test de Mann-Whitney según fue necesario. Para los datos de qPCR llevamos a cabo una transformación logarítmica de la expresión génica normalizada, lo que da más simetría a la distribución, atribuyendo igual peso a las condiciones mayor y menor expresión génica<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0245"><span class="elsevierStyleSup">20</span></a>.</p></span></span><span id="sec0050" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0110">Resultados</span><span id="sec0055" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0115">Homeostasis de la glucosa tras 11<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días con tacrolimus</span><p id="par0090" class="elsevierStylePara elsevierViewall">De acuerdo con la glucemia en ayunas, el TAC indujo diabetes en el 100% de los animales a día<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>12 (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0010">fig. 2</a>). Ningún animal con PBS desarrolló diabetes, y solo el 26,7% (12/45) tenían prediabetes (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0010">fig. 2</a>). En el día<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>12, el 95% de los animales con TAC que fueron sometidos al TTIPG (n<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>20) presentaron niveles de glucosa ><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>200<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/dl a los 120<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>min (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0010">fig. 2</a>). Solo un animal tuvo glucemias entre 140 y 200<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/dl. Ningún animal con PBS presentó diabetes basado en el TTIPG a día<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>12 (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0010">fig. 2</a>).</p><elsevierMultimedia ident="fig0010"></elsevierMultimedia></span><span id="sec0060" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0120">Homeostasis de la glucosa tras el cambio de tacrolimus a ciclosporina</span><p id="par0095" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Entre los días 12 y 17, tras el cambio de TAC a CsA los niveles de glucosa en ayunas disminuyeron en el grupo TAC-CsA (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0015">fig. 3</a>a) y los niveles de glucosa a día<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>17 fueron significativamente menores comparados con los del día<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>12 (p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span><<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0.001) (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0015">fig. 3</a>a). Basado en los niveles de glucosa en ayunas, en el grupo TAC-CsA solo uno de los 22 animales persistía con diabetes (4,5%), 13 de 22 (59,1%) tenían prediabetes, y 9 de 22 (36,4%) mostraron una glucemia en ayunas normal (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0010">fig. 2</a>). Basado en TTIPG, 7 de 15 (46,7%) animales mantenían valores diabéticos (2-h glucosa ><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>200<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/dl) en el grupo TAC-CsA, y 8 de 15 (53,3%) mostraron glucemias normales (<<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>140<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>ml/dl) a día<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>17 (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0010">fig. 2</a>). En cada punto del TTIPG, los animales del grupo TAC-CsA presentaron mayores niveles de glucosa que los de PBS (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0015">fig. 3</a>b) pero menores niveles que aquellos en el grupo TAC-d12 (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0015">fig. 3</a>b). Finalmente, los animales con PBS a día<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>17 mostraron un TTIPG normal (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0015">fig. 3</a>b).</p><elsevierMultimedia ident="fig0015"></elsevierMultimedia><p id="par0100" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Durante el TTIPG del día 17, los animales a los que se les cambió el TAC por CsA no mostraron un incremento en la secreción temprana de insulina (0 a 30<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>min), pero sí menores niveles de insulina que el grupo con PBS (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0015">fig. 3</a>c), siendo comparables a los niveles determinados en el grupo TAC-d12 (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0015">fig. 3</a>c). Sin embargo, en un análisis de sensibilidad, la secreción de insulina mejoró en el subgrupo de animales en los que la diabetes revirtió tras el cambio a CsA (n<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>8), como muestra una tendencia hacia mayores niveles de insulina a los 30 y los 60<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>min y niveles significativamente superiores a los 120<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>min, comparado con los animales en los que la diabetes persistió a pesar del cambio a CsA (n<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>7) (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0015">fig. 3</a>d).</p><p id="par0105" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Finalmente, en el día 12 los niveles de TAC en el TAC-d12 fueron 8,37<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>±<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>3,94<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>ng/ml, y a día<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>17 los niveles de CsA en el grupo TAC-CsA fueron 508,18<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>±<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>67,85<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>ng/ml, con unos niveles residuales de TAC de 2,46<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>±<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,90<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>ng/ml.</p></span><span id="sec0065" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0125">Proliferación de la célula beta pancreática, apoptosis y expresión génica de la insulina tras 11 días con tacrolimus y tras el cambio a ciclosporina</span><p id="par0110" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La cuantificación con bromodeoxiuridina en las células positivas para insulina indicó una menor proliferación en el grupo TAC-d12 tras 11<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días de tratamiento que en el grupo con PBS (p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,009) (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0020">fig. 4</a>a). Al comparar el cambio de TAC a CsA (TAC-CsA) con el grupo TAC-d12, la tasa proliferativa de las células<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>β mejoró significativamente (p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,003) (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0020">fig. 4</a>a). No se apreciaron diferencias en la apoptosis entre ambos grupos (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0020">fig. 4</a>c).</p><elsevierMultimedia ident="fig0020"></elsevierMultimedia><p id="par0115" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El área relativa de islote fue también menor en el grupo TAC-d12 al comprarlo con el de PBS (p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,011) (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0025">fig. 5</a>), pero no hubo diferencias con el TAC-CsA. No se apreciaron diferencias en el número relativo de islotes para ninguno de los grupos.</p><elsevierMultimedia ident="fig0025"></elsevierMultimedia><p id="par0120" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Once días con tacrolimus (TAC-d12) redujo la expresión del gen <span class="elsevierStyleItalic">Ins2</span> significativamente con respecto al grupo con PBS (p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>≤<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0.0001) (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0030">fig. 6</a>). Tras 5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días del cambio a CsA (TAC-CsA), la expresión del gen <span class="elsevierStyleItalic">Ins2</span> volvió a valores comparables a los de PBS (p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,755) y se incrementó significativamente con respecto a TAC-d12 (p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>≤<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,0001) (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0030">fig. 6</a>).</p><elsevierMultimedia ident="fig0030"></elsevierMultimedia></span></span><span id="sec0070" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0130">Discusión</span><p id="par0125" class="elsevierStylePara elsevierViewall">En este modelo de diabetes inducida por tacrolimus en animales con resistencia a la insulina hemos observado que el cambio a ciclosporina-A conduce a: 1)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>una mejora de los niveles de glucemia, tanto en ayunas como durante el TTIPG; 2)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>la reversión de la diabetes en el 53,3% de los animales; 3)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>un mejora en la proliferación de las células β, y finalmente 4)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>un aumento en la expresión génica de la insulina.</p><p id="par0130" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La rata Zucker obesa (RZO) es un modelo conocido de resistencia a la insulina. Hemos observado previamente que en las RZO, el mayor efecto diabetógeno de TAC comparado al de CsA es determinado por la resistencia a la insulina<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0200"><span class="elsevierStyleSup">11</span></a>. Para el presente estudio, cuyo objetivo fue comprender mejor los mecanismos de la reversión de la DMPT, usamos RZO en lugar de modelos animales insulina-sensibles como pueden ser Sprague Dawley, Wistar, o RZL. Hemos confirmado nuestro hallazgos previos, en los que la administración de TAC durante 11<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días inducía diabetes en el 100% de los animales insulinorresistentes diagnosticada bien por glucemia en ayunas o por TTIPG (<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#fig0010">figs. 2 y 3</a>).</p><p id="par0135" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Nuestro principal hallazgo es que, en la diabetes inducida por TAC, el cambio a CsA conduce a una mejoría en el metabolismo de la glucosa y a la reversibilidad de la diabetes en el 50% de los animales (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0010">fig. 2</a>). Esta reversibilidad se observó solo 5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días después del cambio a CsA (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0015">fig. 3</a>a,b). Sin embargo, no fue completa, ya que el 59,1% de los animales mostraron niveles de glucemia dentro del rango de la prediabetes (por glucemia basal en ayunas), y en el 46,7% la diabetes persistió según los resultados del TTIPG (glucemia a 120<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>min ><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>200<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/dl) (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0010">fig. 2</a>). De este modo, los cambios en la homeostasis de la glucosa, aunque relevantes si se comparan con la diabetes establecida en el grupo de TAC, no representaron la reversibilidad total de la diabetes inducida por el fármaco.</p><p id="par0140" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Las causas de la mejoría en el metabolismo de la glucosa tras sustituir el TAC por CsA no están claras, pero podrían estar en parte relacionadas con un incremento en la proliferación de la célula β (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0020">fig. 4</a>). Hemos observado previamente que el TAC es más potente inhibidor de la proliferación de la célula<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>β que la CsA<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0200"><span class="elsevierStyleSup">11</span></a>. Con esto, es plausible que la sustitución de un potente inhibidor de la proliferación (TAC) por uno menos potente (CsA) ayude a la célula<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>β a recuperar en cierta medida su capacidad proliferativa y, en consecuencia, a manejar mejor la hiperglucemia. Hoy en día, las células<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>β son consideradas más resistentes al daño de lo que antes se pensaba, con una alta capacidad de recuperación frente a un ambiente tóxico<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0250"><span class="elsevierStyleSup">21</span></a>. En nuestro trabajo resulta especialmente llamativa la reducción en el área media de islotes pancreáticos tras 11<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días de tratamiento con TAC, la cual no se corresponde con un aumento equivalente en la apoptosis de la célula<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>β. En este aspecto, se han hecho numerosos esfuerzos para determinar los mecanismos que hacen que haya un descenso en la función y en el número de células<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>β en los enfermos con diabetes mellitus tipo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>2. Nuevas evidencias sugieren que estos cambios podrían deberse a procesos de desdiferenciación o transdiferenciación en estas células, y no a procesos de apoptosis, lo que sugiere un nuevo concepto en la patogénesis de la disfunción de la célula<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>β<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0255"><span class="elsevierStyleSup">22</span></a>. Estas nuevas hipótesis estarían en consonancia con nuestro modelo, en el que se observa la pérdida de un marcador de identidad de la célula<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>β como es la insulina, pero por el contrario no se aprecia un aumento en la apoptosis. Además, la pronta recuperación observada tras el cambio del fármaco, así como ya habíamos observado previamente con su retirada<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0200"><span class="elsevierStyleSup">11</span></a>, apoyan la idea de una pérdida de función e identidad de la célula<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>β más que de un proceso de muerte celular. En cualquier caso, son necesarios futuros experimentos para confirmar estas hipótesis en este modelo de diabetes inducida por ICN.</p><p id="par0145" class="elsevierStylePara elsevierViewall">También hemos observado en estudios previos que el TAC es un inhibidor más potente de la expresión del gen <span class="elsevierStyleItalic">Ins2</span> que la CsA<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0200"><span class="elsevierStyleSup">11</span></a>. Según estos datos, la expresión del gen <span class="elsevierStyleItalic">Ins2</span> (homólogo al gen de la proinsulina humana) tras 11<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días de exposición a TAC (TAC-d12) fue significativamente más baja que en los animales que recibieron solo el vehículo (PBS) durante 17<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0030">fig. 6</a>). El incremento en la expresión del gen <span class="elsevierStyleItalic">Ins2</span> después del cambio a CsA fue significativamente superior cuando se comparó con el grupo al que solo se le administró TAC (p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>≤<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,0001 vs. TAC-d12), lo cual sugiere que una mejoría en la expresión del gen <span class="elsevierStyleItalic">Ins2</span> podría estar relacionada con el mejor manejo de la glucosa tras el cambio a CsA.</p><p id="par0150" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los mecanismos moleculares involucrados en el incremento de la proliferación de la célula<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>β asociados al cambio de TAC a CsA son, hasta donde llega nuestro conocimiento, desconocidos. El hecho de que el TAC sea un inhibidor más potente de la calcineurina que la CsA<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0260"><span class="elsevierStyleSup">23</span></a> podría explicar el mayor impacto del primero en la disminución de factores de transcripción dependientes de la calcineurina, como pueden ser el factor nuclear de las células<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>T (NFAT), el elemento de respuesta al cAMP (CREB) y el transductor de CREB (TORC2), los cuales resultan cruciales para la proliferación de la célula<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>β<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0265"><span class="elsevierStyleSup">24-26</span></a>.</p><p id="par0155" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Nuestros resultados son consistentes con los pocos estudios retrospectivos realizados en humanos<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0195"><span class="elsevierStyleSup">10</span></a>. Ghisdal et al.<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0195"><span class="elsevierStyleSup">10</span></a> observaron un 42% de reversibilidad de la DMPTcon el cambio de TAC a CsA en 34 pacientes y un 0% en 20 pacientes que continuaron con TAC. En este trabajo los autores también citaron otro estudio clínico con similares hallazgos. Sin embargo, estos trabajos presentan un diseño post hoc y un bajo poder estadístico para probar eficacia y seguridad. El presente trabajo en animales con resistencia a la insulina provee información sobre los mecanismos y la manera en que la mejoría del metabolismo de la glucosa se asocia a un temprano cambio a CsA, una vez que la diabetes inducida por TAC está establecida. Serán necesarios futuros ensayos clínicos para poder establecer el papel que esta estrategia puede tener a la hora de minimizar el daño producido a la célula β en el establecimiento de la DMPT.</p><p id="par0160" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Nuestro estudio tiene limitaciones. La primera de ellas es la aplicación de los datos obtenidos en un modelo animal a la investigación clínica. Sin embargo, las coincidencias entre este trabajo y los trabajos retrospectivos publicados en humanos<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0195"><span class="elsevierStyleSup">10</span></a> podrían indicar la utilidad de este modelo animal para el estudio del impacto del cambio de TAC a CsA en el metabolismo de la glucosa y en la biología de la célula<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>β. La segunda limitación hace referencia a la aplicación de criterios humanos como prediabetes y diabetes en un modelo animal. Sin embargo, esto es un estándar en investigación básica<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0275"><span class="elsevierStyleSup">26-29</span></a>, y hasta donde sabemos no hay un consenso claro para estas definiciones en roedores. Otra limitación está relacionada con el hecho de la duración del cambio; 5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días de cambio a CsA podrían ser pocos, pero con ellos los niveles de glucosa en ayunas a día<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>17 mostraron mejoras significativas. Además, nuestros resultados muestran que se trata de tiempo suficiente para diluir el efecto tóxico del TAC y, por tanto, descartar la posibilidad de un efecto acumulativo de ambos fármacos en la célula<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>β. El efecto que pueda tener en la homeostasis de la glucosa una exposición más larga a CsA debe ser establecido en el futuro. En el presente estudio utilizamos niveles relativamente elevados de CsA, lo que pudo haber incrementado el riesgo de diabetes en animales que recibieron esta medicación. Sin embargo, el uso de niveles más bajos solo podría haber incrementado las diferencias con el grupo de TAC. Por último, en este modelo animal la diabetes ha sido establecida tras un corto periodo de exposición al fármaco y el experimento no fue diseñado para evaluar la reversibilidad de la diabetes tras un largo periodo, lo cual debe ser investigado.</p><p id="par0165" class="elsevierStylePara elsevierViewall">En resumen, podemos concluir que en la diabetes inducida por TAC el cambio a ciclosporina mejora la homeostasis de la glucosa, lo cual está relacionado con un incremento en la proliferación de la célula<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>β y posiblemente con un incremento en la expresión del gen de la insulina. La evaluación ad hoc de este efecto en pacientes con DMPT debe ser estudiada.</p></span><span id="sec0075" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0135">Financiación</span><p id="par0175" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los autores quieren agradecer al proyecto IMBRAIN (FP7-RE6-POT-2012-CT2012-31637-IMBRAIN), fundado bajo el 7.° Frameworks Programme. Agradecen al Instituto de Salud Carlos<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>III (Fondo de Investigación Sanitaria: FIS) por las siguientes financiaciones: PI 07/0732, REDINREN RD/0021/0008 y PI10/02428. También agradecemos los fondos del IRSIN (Instituto Reina Sofía de Investigación) y Fondos FEDER.</p></span><span id="sec0080" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0140">Conflicto de intereses</span><p id="par0180" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Ninguno de los autores presenta conflicto de intereses en lo referente al presente trabajo.</p></span></span>" "textoCompletoSecciones" => array:1 [ "secciones" => array:11 [ 0 => array:3 [ "identificador" => "xres590886" "titulo" => "Resumen" "secciones" => array:4 [ 0 => array:2 [ "identificador" => "abst0005" "titulo" => "Antecedentes" ] 1 => array:2 [ "identificador" => "abst0010" "titulo" => "Métodos" ] 2 => array:2 [ "identificador" => "abst0015" "titulo" => "Resultados" ] 3 => array:2 [ "identificador" => "abst0020" "titulo" => "Conclusión" ] ] ] 1 => array:2 [ "identificador" => "xpalclavsec606471" "titulo" => "Palabras clave" ] 2 => array:3 [ "identificador" => "xres590887" "titulo" => "Abstract" "secciones" => array:4 [ 0 => array:2 [ "identificador" => "abst0025" "titulo" => "Background" ] 1 => array:2 [ "identificador" => "abst0030" "titulo" => "Methods" ] 2 => array:2 [ "identificador" => "abst0035" "titulo" => "Results" ] 3 => array:2 [ "identificador" => "abst0040" "titulo" => "Conclusion" ] ] ] 3 => array:2 [ "identificador" => "xpalclavsec606470" "titulo" => "Keywords" ] 4 => array:2 [ "identificador" => "sec0005" "titulo" => "Introduction" ] 5 => array:3 [ "identificador" => "sec0010" "titulo" => "Material y métodos" "secciones" => array:7 [ 0 => array:2 [ "identificador" => "sec0015" "titulo" => "Animales" ] 1 => array:2 [ "identificador" => "sec0020" "titulo" => "Diseño experimental" ] 2 => array:2 [ "identificador" => "sec0025" "titulo" => "Definiciones" ] 3 => array:2 [ "identificador" => "sec0030" "titulo" => "Análisis morfométricos e inmunohistoquímicos" ] 4 => array:2 [ "identificador" => "sec0035" "titulo" => "Extracción del ácido ribonucleico" ] 5 => array:2 [ "identificador" => "sec0040" "titulo" => "Reacción en cadena de la polimerasa en tiempo real" ] 6 => array:2 [ "identificador" => "sec0045" "titulo" => "Análisis estadísticos" ] ] ] 6 => array:3 [ "identificador" => "sec0050" "titulo" => "Resultados" "secciones" => array:3 [ 0 => array:2 [ "identificador" => "sec0055" "titulo" => "Homeostasis de la glucosa tras 11 días con tacrolimus" ] 1 => array:2 [ "identificador" => "sec0060" "titulo" => "Homeostasis de la glucosa tras el cambio de tacrolimus a ciclosporina" ] 2 => array:2 [ "identificador" => "sec0065" "titulo" => "Proliferación de la célula beta pancreática, apoptosis y expresión génica de la insulina tras 11 días con tacrolimus y tras el cambio a ciclosporina" ] ] ] 7 => array:2 [ "identificador" => "sec0070" "titulo" => "Discusión" ] 8 => array:2 [ "identificador" => "sec0075" "titulo" => "Financiación" ] 9 => array:2 [ "identificador" => "sec0080" "titulo" => "Conflicto de intereses" ] 10 => array:1 [ "titulo" => "Bibliografía" ] ] ] "pdfFichero" => "main.pdf" "tienePdf" => true "fechaRecibido" => "2014-08-28" "fechaAceptado" => "2015-02-18" "PalabrasClave" => array:2 [ "es" => array:1 [ 0 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Palabras clave" "identificador" => "xpalclavsec606471" "palabras" => array:3 [ 0 => "Diabetes postrasplante" 1 => "Tacrolimus" 2 => "Ciclosporina-A" ] ] ] "en" => array:1 [ 0 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Keywords" "identificador" => "xpalclavsec606470" "palabras" => array:3 [ 0 => "Post-transplant diabetes mellitus" 1 => "Tacrolimus" 2 => "Cyclosporin A" ] ] ] ] "tieneResumen" => true "resumen" => array:2 [ "es" => array:3 [ "titulo" => "Resumen" "resumen" => "<span id="abst0005" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0010">Antecedentes</span><p id="spar0005" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">El cambio a ciclosporina<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>A podría revertir la diabetes inducida por tacrolimus. Sin embargo, los mecanismos de esta reversibilidad se desconocen.</p></span> <span id="abst0010" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0015">Métodos</span><p id="spar0010" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Usamos como modelo de diabetes inducida por tacrolimus las ratas Zucker obesas. Un grupo de 44 ratas Zucker obesas fue tratado con tacrolimus durante 11<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días (0,3<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/kg/día) hasta que desarrollaron diabetes; posteriormente, a)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>22 fueron sacrificadas a día 12 como grupo referencia (tacrolimus-d12), y b)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>en otras 22 el tacrolimus fue reemplazado por ciclosporina (2,5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/kg/día) durante 5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días (tacrolimus-ciclosporina). Veintidós ratas Zucker obesas recibieron vehículo durante 17<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días (grupo control). A todos los animales se les realizó una sobrecarga intraperitoneal de glucosa al final del experimento.</p></span> <span id="abst0015" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0020">Resultados</span><p id="spar0015" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Se analizó la proliferación de la célula<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>β, la apoptosis y la expresión del gen <span class="elsevierStyleItalic">Ins2</span>. En el grupo tacrolimus-ciclosporina, los niveles de glucemia mejoraron significativamente en cada punto del test intraperitoneal de glucosa comparados con el grupo tacrolimus-d12. La diabetes se redujo del 100% en los tacrolimus-d12 hasta el 50% en tacrolimus-ciclosporina. La proliferación de las células β en tacrolimus-ciclosporina se incrementó en comparación con tacrolimus-d12, pero fue menor que en los tratados con vehículo. La expresión génica de <span class="elsevierStyleItalic">Ins2</span> en tacrolimus-ciclosporina fue comparable a los tratados con el vehículo.</p></span> <span id="abst0020" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0025">Conclusión</span><p id="spar0020" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">El cambio temprano de tacrolimus por ciclosporina en la diabetes inducida por tacrolimus incrementa la proliferación de la célula<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>β y revierte la diabetes en un 50% de los casos.</p></span>" "secciones" => array:4 [ 0 => array:2 [ "identificador" => "abst0005" "titulo" => "Antecedentes" ] 1 => array:2 [ "identificador" => "abst0010" "titulo" => "Métodos" ] 2 => array:2 [ "identificador" => "abst0015" "titulo" => "Resultados" ] 3 => array:2 [ "identificador" => "abst0020" "titulo" => "Conclusión" ] ] ] "en" => array:3 [ "titulo" => "Abstract" "resumen" => "<span id="abst0025" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0035">Background</span><p id="spar0025" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Switching to cyclosporin<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>A may result in a reversion of tacrolimus-induced diabetes mellitus. However, mechanisms underlying such a reversion are still unknown.</p></span> <span id="abst0030" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0040">Methods</span><p id="spar0030" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Obese Zucker rats were used as a model for tacrolimus-induced diabetes mellitus. A cohort of 44 obese Zucker rats received tacrolimus for 11 days (0.3<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/kg/day) until diabetes development; then: (a)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>22 rats were euthanized at day 12 and were used as a reference group (tacrolimus-day 12), and (b)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>22 rats on tacrolimus were shifted to cyclosporin (2.5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/kg/day) for 5 days (tacrolimus-cyclosporin). An additional cohort of 22 obese Zucker rats received the vehicle for 17 days and were used as a control group. All animals underwent an intraperitoneal glucose tolerance test at the end of the study.</p></span> <span id="abst0035" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0045">Results</span><p id="spar0035" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">β-cell proliferation, apoptosis and <span class="elsevierStyleItalic">Ins2</span> gene expression were evaluated. Compared to rats in tacrolimus-day 12 group, those in tacrolimus-cyclosporin group showed a significant improvement in blood glucose levels in all assessment points in intraperitoneal glucose tolerance test. Diabetes decreased from 100% in tacrolimus-day 12 group to 50% in tacrolimus-cyclosporin group. Compared to tacrolimus-day 12 group, rats in tacrolimus-cyclosporin group showed an increased β-cell proliferation, but such an increase was lower than in rats receiving the vehicle. <span class="elsevierStyleItalic">Ins2</span> gene expressions in rats receiving tacrolimus-cyclosporin and rats receiving the vehicle were comparable.</p></span> <span id="abst0040" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0050">Conclusion</span><p id="spar0040" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">An early switch from tacrolimus to cyclosporin in tacrolimus-induced diabetes mellitus resulted in an increased β-cell proliferation and reversion of diabetes in 50% of cases.</p></span>" "secciones" => array:4 [ 0 => array:2 [ "identificador" => "abst0025" "titulo" => "Background" ] 1 => array:2 [ "identificador" => "abst0030" "titulo" => "Methods" ] 2 => array:2 [ "identificador" => "abst0035" "titulo" => "Results" ] 3 => array:2 [ "identificador" => "abst0040" "titulo" => "Conclusion" ] ] ] ] "NotaPie" => array:1 [ 0 => array:3 [ "etiqueta" => "1" "nota" => "<p class="elsevierStyleNotepara" id="npar0005">Autoría compartida.</p>" "identificador" => "fn1" ] ] "multimedia" => array:6 [ 0 => array:7 [ "identificador" => "fig0005" "etiqueta" => "Figura 1" "tipo" => "MULTIMEDIAFIGURA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "figura" => array:1 [ 0 => array:4 [ "imagen" => "gr1.jpeg" "Alto" => 530 "Ancho" => 1649 "Tamanyo" => 41020 ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "<p id="spar0045" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Esquema temporal del experimento.</p> <p id="spar0050" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Los animales fueron tratados con tacrolimus (0,3<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/kg/dia) durante 11<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días y aleatoriamente asignados a uno de los siguientes grupos: a)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>TAC-d12 (n<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>22), sacrificados a día<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>12, o b)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>TAC-CsA (n<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>22), tacrolimus fue reemplazado por CsA (2,5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/kg/día) durante 5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días. El control no tratado (PBS, n<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>23) recibió PBS por 11<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días y sacrificado en el día<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>12, o recibieron PBS por 17<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días (PBS, n<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>22).</p>" ] ] 1 => array:7 [ "identificador" => "fig0010" "etiqueta" => "Figura 2" "tipo" => "MULTIMEDIAFIGURA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "figura" => array:1 [ 0 => array:4 [ "imagen" => "gr2.jpeg" "Alto" => 1792 "Ancho" => 2500 "Tamanyo" => 223530 ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "<p id="spar0055" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Porcentaje de ratas Zucker obesas con diabetes, prediabetes o sin alteraciones en el metabolismo de la glucosa de acuerdo con las glucemias en ayunas (izquierda) o con un test de tolerancia intraperitoneal a la glucosa (TTIPG) (derecha) a los 12 y 17 días.</p>" ] ] 2 => array:7 [ "identificador" => "fig0015" "etiqueta" => "Figura 3" "tipo" => "MULTIMEDIAFIGURA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "figura" => array:1 [ 0 => array:4 [ "imagen" => "gr3.jpeg" "Alto" => 1983 "Ancho" => 2976 "Tamanyo" => 211372 ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "<p id="spar0060" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Evolución de la glucemia y los niveles de insulina de la RZO.</p> <p id="spar0065" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">a)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>Glucemia en ayunas para PBS (línea gris) y TAC (línea negra). b)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>Niveles de glucemia y c)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>niveles de insulina en el TTIPG a día<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>17. La línea gris corresponde a PBS y la negra a TAC-CsA. Línea negra discontinua, TAC-d12. d)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>Niveles de inulina durante la TTIPG a día<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>17 en los animales del grupo TAC-CsA con reversión de la diabetes (línea gris) o con diabetes persistente (línea discontinua).</p> <p id="spar0070" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSup">*</span> TAC-CsA vs PBS p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>≤<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,0001.</p> <p id="spar0075" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">a: todas las comparaciones p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,0001.</p> <p id="spar0080" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">b: TAC-CsA o TAC-d12 vs PBS p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,0001; TAC-CsA vs TAC-d12 p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,005.</p> <p id="spar0085" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">c: TAC-CsA y TAC-d12 vs PBS p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,0001; TAC-CsA vs TAC-d12 p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,0001.</p> <p id="spar0090" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">d: TAC-CsA vs PBS p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,012; TAC-d12 vs PBS p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,0001; TAC-d12 vs TAC-CsA p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,002.</p> <p id="spar0095" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">e: TAC-CsA o TAC-d12 vs PBS p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,05; TAC-d12 vs TAC-CsA p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,031.</p> <p id="spar0100" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">f: TAC-CsA vs PBS y vs TAC-CsA p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,05, TAC-d12 vs PBS p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,033.</p> <p id="spar0105" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">g: TAC-CsA vs PBS p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,042; TAC-d12 vs PBS p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,002; TAC-d12 vs TAC-CsA p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,011.</p> <p id="spar0110" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">h: TAC-CsA y TAC-d12 vs PBS p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>≤<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,0001; TAC-d12 vs TAC-CsA p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,002.</p> <p id="spar0115" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">i-l: TAC-CsA-reversión de diabetes vs TAC-CsA-persistencia de diabetes i, j y k: p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,05; l: p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,005.</p>" ] ] 3 => array:7 [ "identificador" => "fig0020" "etiqueta" => "Figura 4" "tipo" => "MULTIMEDIAFIGURA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "figura" => array:1 [ 0 => array:4 [ "imagen" => "gr4.jpeg" "Alto" => 2259 "Ancho" => 2543 "Tamanyo" => 630180 ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "<p id="spar0120" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Proliferación (a) (b) y apoptosis (c) de las células β. Se representa la media ± DE. Las flechas (b) muestran los núcleos BrdU positivos para cada uno de los tratamientos.</p> <p id="spar0195" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">a: TAC-d12 vs PBS p = 0,009.</p> <p id="spar0200" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">b: TAC-CsA vs PBS p = 0,001 y vs TAC-d12 p = 0,003.</p> <p id="spar0205" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">c: TAC-d12 vs PBS p = 0,172.</p> <p id="spar0945" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">d: TAC-CsA vs PBS p = 0,311 y vs TAC-d12 p = 0,824.</p>" ] ] 4 => array:7 [ "identificador" => "fig0025" "etiqueta" => "Figura 5" "tipo" => "MULTIMEDIAFIGURA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "figura" => array:1 [ 0 => array:4 [ "imagen" => "gr5.jpeg" "Alto" => 901 "Ancho" => 2992 "Tamanyo" => 113272 ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "<p id="spar0150" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Morfometría de los islotes de RZO tratadas con PBS o TAC durante 11<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días (TAC-d12) o TAC durante 11<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días con cambio a CsA (TAC-CsA) durante 5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días (n<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>10 por tratamiento). a)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>Área de islotes ajustada por el área total de páncreas. b)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>Número de islotes ajustado por milímetros cuadrados de páncreas. Se representa la media ± DE.</p> <p id="spar0155" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">a: TAC-d12 vs PBS p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,011.</p> <p id="spar0160" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">b: TAC-CsA vs PBS p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,016 y vs TAC-d12 p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,197.</p> <p id="spar0165" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">c: TAC-d12 vs PBS p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,523.</p> <p id="spar0170" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">d: TAC-CsA vs PBS p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,078 y vs TAC-d12 p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,892.</p>" ] ] 5 => array:7 [ "identificador" => "fig0030" "etiqueta" => "Figura 6" "tipo" => "MULTIMEDIAFIGURA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "figura" => array:1 [ 0 => array:4 [ "imagen" => "gr6.jpeg" "Alto" => 1008 "Ancho" => 1511 "Tamanyo" => 51775 ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "<p id="spar0175" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Expresión del gen <span class="elsevierStyleItalic">Ins2</span> en RZO con PBS o TAC durante 11<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días (TAC-d12) o TAC durante 11<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días con cambio a CsA (TAC-CsA) durante 5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>días (n<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>10 por tratamiento).</p> <p id="spar0180" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Se representa la media ± DE.</p> <p id="spar0185" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">a: TAC-d12 vs PBS p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>≤<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,0001.</p> <p id="spar0190" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">b: TAC-CsA vs PBS p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,755 y vs TAC-d12 p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>≤<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,0001.</p>" ] ] ] "bibliografia" => array:2 [ "titulo" => "Bibliografía" "seccion" => array:1 [ 0 => array:2 [ "identificador" => "bibs0005" "bibliografiaReferencia" => array:29 [ 0 => array:3 [ "identificador" => "bib0150" "etiqueta" => "1" "referencia" => array:1 [ 0 => array:2 [ "contribucion" => array:1 [ 0 => array:2 [ "titulo" => "Immunosuppression: Evolution in practice and trends, 1993-2003" "autores" => array:1 [ 0 => array:2 [ "etal" => false "autores" => array:6 [ 0 => "R. 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2024 Octubre | 120 | 32 | 152 |
2024 Septiembre | 82 | 40 | 122 |
2024 Agosto | 117 | 92 | 209 |
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2024 Marzo | 103 | 32 | 135 |
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2024 Enero | 70 | 15 | 85 |
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2020 Noviembre | 89 | 18 | 107 |
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2020 Agosto | 88 | 21 | 109 |
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2020 Junio | 133 | 19 | 152 |
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2020 Marzo | 249 | 17 | 266 |
2020 Febrero | 221 | 31 | 252 |
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