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La lesión más frecuente es la necrosis tubular aguda (NTA), que se incrementa cuando los tiempos de isquemia sobrepasan los 30 minutos, reflejando que éstos son determinantes en la viabilidad del riñón una vez restablecida la reoxigenación<span class="elsevierStyleSup">3-6</span>.</p><p class="elsevierStylePara">La isquemia contribuye a la disfunción endotelial<span class="elsevierStyleSup">7</span>, lo que crea un desequilibrio entre los agentes vasodilatadores y los agentes vasoconstrictores, desplazándose el equilibrio hacia la producción de estos últimos, lo que culmina con una vasoconstricción no controlada<span class="elsevierStyleSup">3-5</span>, principalmente de las arteriolas aferentes y de los capilares glomerulares, lo que disminuye el área de filtración y afecta, en el mismo sentido, a la intensidad de filtración glomerular<span class="elsevierStyleSup">3</span>. El aumento de la resistencia vascular en las arteriolas aferentes y eferentes produce una afectación del flujo sanguíneo renal (FSR) y reduce aún más la intensidad de filtrado glomerular (IFG). Durante la reperfusión se crea un flujo sanguíneo turbulento, capaz de dañar las paredes del endotelio por fuerzas de cizallamiento sobre la íntima vascular, lo que provoca una agudización de los eventos anteriormente planteados en el riñón postisquémico<span class="elsevierStyleSup">1,8</span>.</p><p class="elsevierStylePara">La disfunción tubular aparece como consecuencia de la disminución del adenosín trisfosfato (ATP) y la deprivación de oxígeno altera el equilibrio celular<span class="elsevierStyleSup">8</span>, se produce apoptosis y autofagia, lo que irrevocablemente compromete la función del órgano y la vida del sujeto.</p><p class="elsevierStylePara">Las alteraciones en el epitelio tubular provocan un proceso inflamatorio que se extiende a nivel sistémico y que conduce al deterioro de la circulación sanguínea y del órgano. Además, con la descamación de la células epiteliales, se produce la obstrucción de los túbulos y, en consecuencia, el incremento de la presión hidrostática de la cápsula de Bowman, que culmina con el descenso de la IFG<span class="elsevierStyleSup">1,7,9</span>.</p><p class="elsevierStylePara">En la I/R tiene un papel protagónico la producción de especies reactivas del oxígeno (ERO), que originan un desequilibrio entre la actividad de sistemas prooxidantes y antioxidantes, con predominio de la actividad de los primeros, lo que se conoce como estrés oxidativo<span class="elsevierStyleSup">10</span>.</p><p class="elsevierStylePara">Se ha demostrado que el precondicionamiento oxidativo con ozono ejerce un efecto modulador del estado redox de las células tubulares, al estimular los mecanismos antioxidantes endógenos<span class="elsevierStyleSup">5,11</span>. Trabajos más recientes han obtenido resultados similares mediante el uso de poscondicionamiento con ozono<span class="elsevierStyleSup">12,13</span> y poscondicionamiento isquémico<span class="elsevierStyleSup">14,15</span>.</p><p class="elsevierStylePara">El objetivo de este trabajo ha sido evaluar el efecto del poscondicionamiento oxidativo con ozono sobre la función y la morfología renal en un modelo de I/R en ratas.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">MATERIALES Y MÉTODOS</span></p><p class="elsevierStylePara">Se emplearon 40 ratas Wistar hembras jóvenes, con un peso de 150-200 g. Los procedimientos se realizaron según lo aprobado por los comités internacionales  para el cuidado de los animales, de acuerdo con las regulaciones ya establecidas para la experimentación animal (ICILAS, 2000).</p><p class="elsevierStylePara">Las ratas fueron distribuidas en cuatro grupos: control negativo (<span class="elsevierStyleItalic">sham</span>), control positivo (sometido a I/R), oxígeno (sometido a I/R con tratamiento con oxígeno) y ozono (sometido a I/R con tratamiento con ozono).</p><p class="elsevierStylePara">Todos los animales de todos los grupos fueron anestesiados con pentobarbital sódico por vía intraperitoneal a la dosis de 30 mg/kg de peso corporal y se les administraron 50 U/100 g de peso corporal de heparina por la misma vía. Se les realizó la laparotomía por incisión longitudinal en la línea media hasta llegar a la cavidad peritoneal. Una vez localizado el riñón, se disecaron y expusieron los paquetes vasculares renales y se colocaron clanes hemostáticos durante 60 min con el objetivo de realizar una isquemia renal a todos los animales, excepto a los del grupo control negativo. Posteriormente se procedió a realizar la rafia de la herida y se dejaron evolucionar durante 10 días.</p><p class="elsevierStylePara">A los animales del grupo oxígeno se les administró una aplicación diaria de 26 mg/kg de peso de oxígeno y a los del grupo ozono se les administró una aplicación diaria de 0,5 mg/kg de peso de ozono. Estos tratamientos se realizaron mediante una cánula rectal, de forma ininterrumpida durante diez días. El ozono se produjo mediante el equipo generador de ozono de uso médico Ozomed, fabricado en el Centro de Investigaciones del Ozono de La Habana, Cuba. El ozono se obtuvo a partir de oxígeno de uso terapéutico y se utilizó inmediatamente después de ser generado<span class="elsevierStyleSup">5,12,13</span>.</p><p class="elsevierStylePara">Los tratamientos se comenzaron 12 horas después de realizadas las intervenciones quirúrgicas para evitar posibles interacciones medicamentosas entre el anéstesico y el ozono o el oxígeno. Concluida la última aplicación, los animales fueron colocados durante 24 horas en jaulas metabólicas y se tomaron muestras de orina para las posteriores determinaciones. Se les realizó aclaramiento plasmático compartimental de ácido para-amino hipúrico (PAH) e inulina para determinar el flujo plasmático renal (FPR) e IFG.</p><p class="elsevierStylePara">Se extrajo sangre por punción intracardiaca para determinar la concentración de creatinina plasmática y a continuación se realizó una laparotomía xifopubiana y se colocó un separador abdominal, se localizaron los riñones y se realizó nefrectomía bilateral para estudio histológico.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Pruebas de función renal</span></p><p class="elsevierStylePara">Procedimiento para la realización de aclaramiento plasmático compartimental</p><p class="elsevierStylePara">A las ratas se les administraron 100 U/100 g de peso corporal de heparina y fueron anestesiadas con 30 mg/kg de peso corporal de pentobarbital sódico por vía intraperitoneal. Se rasuraron ambas regiones inguinales y se realizó una incisión oblicua. Se disecaron ambos paquetes vasculonerviosos y se canuló la vena femoral izquierda. Se administraron 0,8 ml de una solución de 12 mg/ml de PAH e igual volumen de una solución de 2 mg/ml de inulina, para alcanzar niveles plasmáticos adecuados de esas sustancias. Posteriormente, se disecó y canuló la arteria femoral del lado contrario. Con la primera administración de los bolos se definió el tiempo cero y se comenzaron a extraer 0,2 ml de sangre cada 10 minutos hasta completar 10 muestras<span class="elsevierStyleSup">13,16</span>.</p><p class="elsevierStylePara">Técnicas para la determinación de las concentraciones de ácido para-amino hipúrico e inulina en plasma</p><p class="elsevierStylePara">Para la determinación de PAH e inulina, se obtuvo el plasma y se sometió a un proceso de desproteinización mediante sulfato de cadmio.</p><p class="elsevierStylePara">Para la determinación de PAH se siguió la técnica fotocolorimétrica de Bratton y Marshall<span class="elsevierStyleSup">17</span>, modificada por Smith<span class="elsevierStyleSup">18</span>. La inulina se determinó por el método fotocolorimétrico directo del resorcinol<span class="elsevierStyleSup">17</span> sin tratamiento alcalino.</p><p class="elsevierStylePara">Estos aclaramientos se calcularon mediante el análisis de descomposición multicompartimental de las curvas de desaparición respectivas de dichas sustancias en plasma, utilizando para ello un <span class="elsevierStyleItalic">software</span> matemático MATLAB versión 6.5 para Windows<span class="elsevierStyleSup">15,16</span>.</p><p class="elsevierStylePara">Técnica microanálitica para la determinación de la concentración de creatinina en plasma</p><p class="elsevierStylePara">Se obtuvo el plasma y se desproteinizó por el método de tungstato de sodio, modificado por Brot y Sirata<span class="elsevierStyleSup">19</span>, mediante técnica fotocolorimétrica<span class="elsevierStyleSup">20</span>.</p><p class="elsevierStylePara">Determinación de concentración de proteínas</p><p class="elsevierStylePara">Las concentraciones de las proteínas se determinaron por la técnica fotocolorimétrica de Biuret<span class="elsevierStyleSup">21</span><span class="elsevierStyleBold">.</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Estudio histopatológico</span></p><p class="elsevierStylePara">Procesamiento histológico</p><p class="elsevierStylePara">Se seccionaron los riñones mediante un corte sagital a través del hilio. La fijación se realizó en una solución de formol neutro tamponado al 10% (tampón fosfato de sodio 0,01 mM/l, pH 7,4 y se procedió según método convencional de inclusión en parafina. Se realizaron cortes de 3 µm de grosor y se utilizaron dos coloraciones convencionales: hematoxilina y eosina y ácido periódico de Schiff (PAS). Se realizaron estudios por microscopia de luz en un microscopio Nikon 50i, utilizando el lente de aceite de inmersión (1.000 X). Las imágenes se obtuvieron mediante una cámara digital de alta resolución DS-5M-U1 acoplada al microscopio.</p><p class="elsevierStylePara">Análisis morfológico y morfométrico</p><p class="elsevierStylePara">Para la valoración del daño histológico global se estudió un corte histológico de la hemisección vertical del riñón derecho de cada animal.</p><p class="elsevierStylePara">En cada corte se evaluaron 10 campos de la zona córtico-medular, que abarcaron desde el polo superior hasta el inferior de cada riñón, se estudiaron un promedio de 30 a 35 túbulos proximales por animal para un total de 150 a 165 túbulos por grupo de estudio. Se analizaron solamente los túbulos que aparecieron cortados transversalmente y en ellos se determinó la presencia o ausencia de: vacuolización celular; núcleos apoptóticos, balonados o picnóticos; necrosis celular; discontinuidad de la membrana basal tubular (MBT); denudación de la MBT; descamación celular; ribete en cepillo; cilindros en la luz y células inflamatorias peritubulares.</p><p class="elsevierStylePara">Para la cuantificación de estas variables se utilizó un programa desarrollado para la plataforma .Net, empleando el ambiente de desarrollo Visual Studio 2008, lenguaje c#, en el cual se consideró 0 la estructura histológica normal y 1 las condiciones patológicas de cada variable<span class="elsevierStyleSup">22</span>. </p><p class="elsevierStylePara">Para la valoración del daño histológico global se le asignaron diferentes valores a las variables, según su contribución al daño tubular (4, necrosis celular, descamación celular y denudación de la MBT; 3, pérdida del ribete en cepillo y vacuolización celular; 2, cilindros en la luz, células inflamatorias peritubulares y discontinuidad de la MBT; 1, núcleos apoptóticos, balonados o picnóticos). Se estableció un valor límite de daño en ocho, considerada la suma mínima de daño irreversible. Mediante el programa se calculó el porcentaje de túbulos dañados por campo y se obtuvieron 10 valores de daño histológico global para cada animal.</p><p class="elsevierStylePara">Para el procesamiento estadístico se empleó el programa Graph Pad Prism versión 5.0 para Windows. En todos los casos se determinaron los valores de media y desviación estándar mediante estadística descriptiva. Se realizaron comparaciones entre grupos en cuanto al porciento de túbulos dañados por campo. Para el análisis de las diferencias entre grupos se realizaron las pruebas no paramétricas Kruskal-Wallis y la prueba de comparaciones múltiples de Dunn.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">RESULTADOS</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Pruebas de función renal</span></p><p class="elsevierStylePara">El grupo control positivo tuvo una disminución significativa en relación al control negativo en los valores de FPR e IFG, respectivamente. Entre los grupos control positivo y oxígeno no hubo diferencias estadísticamente significativas. En el grupo ozono el FPR no disminuyó como en los grupos control positivo y oxígeno (tabla 1).</p><p class="elsevierStylePara">Los grupos control positivo y oxígeno tuvieron un aumento de la FF, y se encontraron los mayores valores en el grupo oxígeno. El poscondicionamiento con ozono no alteró el valor de la FF con respecto al grupo control negativo (tabla 1).</p><p class="elsevierStylePara">En los resultados analizados no hubo diferencias significativas entre los grupos control negativo y ozono en cuanto a la proteinuria, pero sí con respecto a los otros grupos (tabla 1).</p><p class="elsevierStylePara">En cuanto al comportamiento de la creatinina, se observaron diferencias significativas en todos los grupos con respecto al control negativo, aunque en el grupo ozono hubo una mejoría que no llegó a los valores normales. Entre los grupos control positivo y oxígeno no hubo diferencias estadísticamente significativas (tabla 1).</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Estudio histopatológico</span></p><p class="elsevierStylePara">En los animales del grupo control negativo se apreció la estructura normal de los túbulos proximales (figura 1). Los riñones pertenecientes al control positivo y al grupo oxígeno tuvieron un daño importante de la estructura de los túbulos proximales, lo que se evidenció en pérdida del ribete en cepillo, dilatación tubular, necrosis de las células epiteliales, formación de cilindros en la luz tubular, interrupción y/o borramiento de las MBT (figura 2 y figura 3).</p><p class="elsevierStylePara">El poscondicionamiento con ozono indujo una recuperación de la morfología tubular. Se observó una mejor preservación del ribete en cepillo y demás estructuras de las células de los túbulos proximales (figura 4). Los animales del grupo ozono mostraron de forma significativa un menor daño histológico global que los grupos control positivo y oxígeno (figura 5).</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">DISCUSIÓN</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Pruebas de función renal</span></p><p class="elsevierStylePara">La disminución significativa en los valores de FPR e IFG en el grupo control positivo en relación con el control negativo se debe posiblemente al daño endotelial ocasionado por la isquemia<span class="elsevierStyleSup">12,13</span>, el cual está agudizado por el aumento de las fuerzas de cizallamiento, que incrementa aún más la disfunción del endotelio y la formación de ERO<span class="elsevierStyleSup">3</span>.</p><p class="elsevierStylePara">La isquemia ocasiona un aumento de liberación de renina y, por tanto, de formación de angiotensina; todos estos efectos sumados hacen que el FSR se mantenga disminuido después de la reperfusión y que, por tanto, disminuya el FG<span class="elsevierStyleSup">23</span>, a lo cual contribuye también la angiotensina por su efecto de disminuir el coeficiente de filtración al actuar sobre las células mesangiales<span class="elsevierStyleSup">1,3</span>.<span class="elsevierStyleSup"> </span>Además, las ERO alteran la integridad de la barrera de filtración<span class="elsevierStyleSup">10,22</span>, ya que atacan a muchos de sus componentes como colágeno tipo IV, proteoglicanos y sialoproteínas<span class="elsevierStyleSup">24-26</span>.</p><p class="elsevierStylePara">Entre los grupos control positivo y oxígeno no hubo diferencias estadísticamente significativas, lo que demostró que el oxígeno no influyó en la recuperación de la función renal, ya que el oxígeno agudiza la formación de ERO<span class="elsevierStyleSup">12</span>.</p><p class="elsevierStylePara">En el grupo ozono se produjo un aclaramiento de PAH e inulina, con valores significativamente más altos que en los grupos control positivo y oxígeno. Este efecto pudiera estar causado por la influencia directa del ozono sobre la oxigenación de los tejidos, ya que mejora la reología de los eritrocitos, aumentando su flexibilidad y carga eléctrica<span class="elsevierStyleSup">7</span>, con lo que disminuyen la viscosidad de la sangre y la agregación plaquetaria, lo cual mejora el FPR en el riñón sometido a isquemia<span class="elsevierStyleSup">6,12,14</span>.</p><p class="elsevierStylePara">En el grupo ozono el FPR no disminuyó como en los grupos control positivo y oxígeno; se filtró una menor fracción de plasma. Este efecto causa una elevación de la presión coloidosmótica del plasma en los capilares glomerulares, menos notoria que en el grupo control positivo y oxígeno y, por tanto, un menor efecto inhibidor sobre la IFG<span class="elsevierStyleSup">7,23</span>.</p><p class="elsevierStylePara">La proteinuria es signo de daño renal; la no significación con respecto al control demuestra la protección antioxidante del ozono, disminuyendo las interleucinas proinflamatorias, que se manifiestan en la inflamación que producen las ERO<span class="elsevierStyleSup">23</span>. Cuando se produce esta inflamación en el glomérulo ocurre una pérdida de la discriminación del tamaño de las moléculas que se filtran<span class="elsevierStyleSup">25-27</span> y, en consecuencia, en el producto filtrado aparecen globulinas de elevado peso molecular y albúmina en cantidades que se aproximan a las existentes en el plasma, lo que se observó en el control positivo y en el grupo oxígeno<span class="elsevierStyleSup">4,23,28</span>.</p><p class="elsevierStylePara">La creatinina es una sustancia que depende del FG para su aclaramiento<span class="elsevierStyleSup">24</span>.<span class="elsevierStyleSup"> </span>El grupo ozono presentó una recuperación del índice de filtrado glomerular, en contraste con los otros grupos, lo que se evidencia en el comportamiento de la excreción de creatinina y por tanto en su concentración en el plasma. El oxígeno no influyó en la recuperación de la función.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Estudio histopatológico</span></p><p class="elsevierStylePara">La pérdida del ribete en cepillo, la dilatación tubular, la necrosis de las células epiteliales, la formación de cilindros en la luz tubular y la interrupción y/o borramiento de las MBT encontrados en el grupo control positivo constituyen marcadores morfológicos de daño renal inducidos por I/R<span class="elsevierStyleSup">27,29</span>.</p><p class="elsevierStylePara">El poscondicionamiento con ozono indujo una recuperación de la morfología tubular y, como consecuencia, en este grupo se constató una mejor conservación de la función renal. Se considera que en el grupo ozono el tejido renal soportó mejor el evento de I/R bajo nuestras condiciones experimentales, debido a las características antioxidantes del ozono que preserva los niveles tisulares de productos avanzados de la glicosilación,<span class="elsevierStyleInf"> </span>lo cual se corrobora con los resultados de Calunga, et al.<span class="elsevierStyleSup">12</span>.</p><p class="elsevierStylePara">En cuanto a los resultados histológicos, los nuestros coinciden con los ya enunciados en la literatura, sobre el efecto del poscondicionamiento isquémico en órganos sometidos a I/R<span class="elsevierStyleSup">12,14</span>.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">CONCLUSIONES </span></p><p class="elsevierStylePara">El poscondicionamiento con ozono mostró un efecto protector en la preservación de la función renal y la disminución del daño histológico global de los túbulos proximales inducido por I/R.</p><p class="elsevierStylePara">La efectividad del poscondicionamiento con ozono permitiría su aplicación ante el daño renal por I/R. Este tipo de tratamiento tiene la ventaja respecto a los precondicionantes de que puede ser aplicado en situaciones clínicas no previstas.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Fuente de financiación</span></p><p class="elsevierStylePara">Instituto de Ciencias Básicas y Preclínicas Victoria de Girón, Departamento de Fisiología, Laboratorio de Fisiología Renal.</p><p class="elsevierStylePara"><a href="grande/10873_108_14517_es_10873_t1.jpg" class="elsevierStyleCrossRefs"><img src="10873_108_14517_es_10873_t1.jpg" alt="Efecto del poscondicionamiento oxidativo con ozono sobre las pruebas de función renal"></img></a></p><p class="elsevierStylePara">Tabla 1. Efecto del poscondicionamiento oxidativo con ozono sobre las pruebas de función renal</p><p class="elsevierStylePara"><a href="grande/10873_108_14518_es_10873_f1.jpg" class="elsevierStyleCrossRefs"><img src="10873_108_14518_es_10873_f1.jpg" alt="Túbulo proximal de región córtico-medular de animal control negativo. Coloración de PAS."></img></a></p><p class="elsevierStylePara">Figura 1. Túbulo proximal de región córtico-medular de animal control negativo. Coloración de PAS.</p><p class="elsevierStylePara"><a href="grande/10873_108_14519_es_10873_f2.jpg" class="elsevierStyleCrossRefs"><img src="10873_108_14519_es_10873_f2.jpg" alt="Túbulo proximal de región córtico-medular de animal control positivo. Coloración de PAS."></img></a></p><p class="elsevierStylePara">Figura 2. Túbulo proximal de región córtico-medular de animal control positivo. Coloración de PAS.</p><p class="elsevierStylePara"><a href="grande/10873_108_14520_es_10873_f3.jpg" class="elsevierStyleCrossRefs"><img src="10873_108_14520_es_10873_f3.jpg" alt="Túbulo proximal de región córtico-medular de animal tratado con ozono. Coloración de PAS."></img></a></p><p class="elsevierStylePara">Figura 3. Túbulo proximal de región córtico-medular de animal tratado con ozono. Coloración de PAS.</p><p class="elsevierStylePara"><a href="grande/10873_108_14521_es_10873_f4.jpg" class="elsevierStyleCrossRefs"><img src="10873_108_14521_es_10873_f4.jpg" alt="Segmentos de túbulos proximales de región córtico-medular de animal tratado con oxígeno. Coloración de PAS."></img></a></p><p class="elsevierStylePara">Figura 4. Segmentos de túbulos proximales de región córtico-medular de animal tratado con oxígeno. Coloración de PAS.</p><p class="elsevierStylePara"><a href="grande/10873_108_14522_es_10873_f5.jpg" class="elsevierStyleCrossRefs"><img src="10873_108_14522_es_10873_f5.jpg" alt="Daño histológico global. "></img></a></p><p class="elsevierStylePara">Figura 5. Daño histológico global. </p>" "pdfFichero" => "P1-E523-S3000-A10873.pdf" "tienePdf" => true "PalabrasClave" => array:2 [ "es" => array:5 [ 0 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Palabras clave" "identificador" => "xpalclavsec434705" "palabras" => array:1 [ 0 => "Isquemia/reperfusión" ] ] 1 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Palabras clave" "identificador" => "xpalclavsec434707" "palabras" => array:1 [ 0 => "Poscondicionamiento" ] ] 2 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Palabras clave" "identificador" => "xpalclavsec434709" "palabras" => array:1 [ 0 => "Ozono" ] ] 3 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Palabras clave" "identificador" => "xpalclavsec434711" "palabras" => array:1 [ 0 => "Función renal" ] ] 4 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Palabras clave" "identificador" => "xpalclavsec434713" "palabras" => array:1 [ 0 => "Morfología renal" ] ] ] "en" => array:5 [ 0 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Keywords" "identificador" => "xpalclavsec434706" "palabras" => array:1 [ 0 => "Ischaemia/reperfusion" ] ] 1 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Keywords" "identificador" => "xpalclavsec434708" "palabras" => array:1 [ 0 => "Postconditioning" ] ] 2 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Keywords" "identificador" => "xpalclavsec434710" "palabras" => array:1 [ 0 => "Ozone" ] ] 3 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Keywords" "identificador" => "xpalclavsec434712" "palabras" => array:1 [ 0 => "Renal function" ] ] 4 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Keywords" "identificador" => "xpalclavsec434714" "palabras" => array:1 [ 0 => "Renal morphology" ] ] ] ] "tieneResumen" => true "resumen" => array:2 [ "es" => array:1 [ "resumen" => "<p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Antecedentes: </span>La isquemia-reperfusión es causa fundamental de complicaciones renales. La lesión más frecuente es la necrosis tubular aguda (NTA). En modelos de isquemia-reperfusión se ha demostrado que el precondicionamiento oxidativo con ozono ejerce un efecto modulador del estado redox de las células renales, al estimular los mecanismos antioxidantes endógenos. Trabajos más recientes, que han empleado el postcondicionamiento isquémico, han obtenido resultados similares. <span class="elsevierStyleBold">Objetivos: </span>Evaluar el efecto del poscondicionamiento oxidativo con ozono sobre la morfología y la función renal en un modelo de isquemia-reperfusión en ratas. <span class="elsevierStyleBold">Métodos: </span>Se utilizaron 40 ratas Wistar hembras con un peso entre 150 y 200 g, divididas al azar en cuatro grupos (control negativo, control positivo, oxígeno y ozono). Los grupos control positivo, oxígeno y ozono fueron sometidos a 60 minutos de isquemia y 10 días de reperfusión. Durante la reperfusión al grupo oxígeno se le administraron 26 mg/kg de peso corporal de oxígeno y al grupo ozono, 0,5 mg/kg de peso corporal de ozono, por vía rectal. Al final del experimento se tomaron muestras de orina y de sangre para las pruebas de función renal y se extrajeron los riñones para el estudio histológico. <span class="elsevierStyleBold">Resultados: </span>El grupo ozono no mostró diferencias significativas en los valores de fracción de filtración y proteinuria con respecto al grupo control negativo. Los valores de intensidad de filtrado glomerular, flujo plasmático renal y creatinina mostraron una mejoría ligera en comparación con los grupos oxígeno y control positivo. El grupo ozono mostró de forma significativa un menor daño histológico global que los grupos control positivo y oxígeno. <span class="elsevierStyleBold">Conclusiones:</span> El poscondicionamiento con ozono tuvo un efecto protector en la preservación de la función y de la morfología renal.</p>" ] "en" => array:1 [ "resumen" => "<p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"><span class="elsevierStyleItalic">Background: </span></span><span class="elsevierStyleItalic">Ischaemia-reperfusion is one of the main causes of kidney complications.</span><span class="elsevierStyleItalic"> The most frequent lesion is acute tubular necrosis. Ozone oxidative preconditioning exerts a modulatory effect of redox state of renal cells in models of ischaemia-reperfusion, by stimulating endogenous antioxidant mechanisms. Similar results have been obtained in more recent studies using ischaemic postconditioning. <span class="elsevierStyleBold">Objectives: </span>To evaluate the effect of ozone oxidative postconditioning on renal function and morphology in an ischaemia-reperfusion rat model. <span class="elsevierStyleBold">Methods: </span>We used<span class="elsevierStyleBold"> </span>forty female Wistar rats weighing between 150g-200g randomly divided into 4 groups (negative control, positive control, oxygen and ozone). The groups: positive control, oxygen and ozone were subjected to 60 minutes of ischaemia and 10 days of reperfusion. During reperfusion, the oxygen group was given 26mg/kg body weight of oxygen, and the ozone group 0.5mg/kg body weight of ozone, rectally. At the end of the experiment urine and blood samples were taken for renal function tests and kidneys were removed for histological study. <span class="elsevierStyleBold">Results:</span> The ozone group showed no significant differences for filtration fraction and proteinuria compared to the negative control group. The glomerular filtrate rate, renal plasma flow and creatinine showed a slight improvement in comparison with oxygen and positive control groups. 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2024 Octubre | 115 | 45 | 160 |
2024 Septiembre | 145 | 42 | 187 |
2024 Agosto | 144 | 73 | 217 |
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2024 Abril | 118 | 37 | 155 |
2024 Marzo | 123 | 30 | 153 |
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2024 Enero | 80 | 21 | 101 |
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2020 Marzo | 60 | 14 | 74 |
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2020 Enero | 87 | 21 | 108 |
2019 Diciembre | 74 | 15 | 89 |
2019 Noviembre | 120 | 21 | 141 |
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