El ácido ribonucleico de interferencia. ¿Una curiosidad que merece un premio Nóbel o una esperanza terapéutica?
Interference RNA: A curiosity that merits a Nobel price or a future therapeutic tool
Patricia Fernandez Muñoz, Jose Miguel Lopez Novoa
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López-Novoa.</p> <p class="elsevierStylePara">Instituto Reina Sofía de Investigación Nefrológica; Departamento de Fisiología y Farmacología, Universidad de Salamanca; Edificio Departamental, Campus Miguel de Unamuno, 37007 Salamanca.</p> <p class="elsevierStylePara">Correspondencia: Dr. José Miguel Lopez-Novoa, Departamento de Fisiología y Farmacología, Universidad de Salamanca; Edificio Departamental, Campus Miguel de Unamuno, 37007 Salamanca. Tel: 923294472; FAX: 923294669; E-mail: jmlnovoa@usal.es</p> <br /> <p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Introducción</span></p> <p class="elsevierStylePara">En palabras del premio Nóbel británico Francis Crick el ¿dogma central de la biología molecular¿ consiste en que existe un flujo de información genética desde el genoma, constituido fundamentalmente por el ácido desoxirribonucleico (DNA) nuclear, al ácido ribonucleico mensajero (mRNA) y a las proteínas, de forma que las instrucciones para sintetizar las proteínas, contenidas en el DNA, son copiadas al mRNA y éste sirve como molde para la síntesis de las proteínas en el complejo ribosomas-retículo endoplasmático. </p> <p class="elsevierStylePara">Nuestro genoma está compuesto por alrededor de 30 mil genes. Sin embargo, cada una de nuestras células usa sólo una parte de ellos en cada momento, dependiendo del tipo celular y de otras situaciones como son el ciclo celular, la influencia de hormonas o citocinas, etc. La decisión de qué genes son expresados (esto es, qué nuevas proteínas se sintetizan) y cuales no, es controlada por la maquinaria que copia DNA a mRNA en un proceso llamado trascripción. Éste, a su vez, puede ser modulado por varios factores. Los principios fundamentales de la regulación de la expresión genética fueron identificados hace más de 40 años por los franceses François Jacob y Jacques Monod, también galardonados con el premio Nóbel.</p> <p class="elsevierStylePara">Desde principios de los años 70 se han desarrollado muchas técnicas basadas en los ácidos nucleicos para silenciar genes con un fin terapéutico, entre ellas técnicas de DNA antisentido (secuencias de DNA complementarias a los mRNA), técnicas de mutantes dominantes negativos (introducción de DNAs que codifican para proteínas mutadas que ocupan el lugar de las originales pero no ejercen función), y animales knock-out (en los que se ha eliminado la trascripción de un gen concreto), entre otras. </p> <p class="elsevierStylePara">Los norteamericanos <a href="http://www.nytimes.com/aponline/world/AP-Nobel-Medicine.html?hp&ex=1159848000&en=7043d541184b2817&ei=5094&partner=homepage" class="elsevierStyleCrossRefs">Andrew Z. Fire (Profesor en la Facultad de Medicina de la Universidad de Stanford) y Craig C. Mello</a> (investigador del Instituto Médico Howard Hughes y Profesor de medicina molecular en la Facultad de Medicina de la Universidad de Massachussets) han recibido el premio Nóbel en Medicina y Fisiología correspondiente al año 2006 por descubrir el mecanismo del RNA de interferencia (iRNA), una de las aproximaciones al silenciamiento génico que más éxito ha tenido. El iRNA está basado en el silenciamiento del mRNA que codifica para la proteína que queremos eliminar por la degradación de ese mRNA. Mediante esta técnica se puede disminuir la expresión de la proteína de interés, pero sin llegar a eliminarla. Esta técnica se está utilizando ampliamente en cultivos celulares puesto que es relativamente fácil de llevar a cabo. También se utiliza en organismos vivos, y se replantea utilizarla para el tratamiento de enfermedades basadas en la sobreexpresión de un gen. Si se conoce que la expresión de un gen concreto causa una enfermedad, se podría usar la interferencia de RNA para evitarla. El objetivo de este breve editorial es explicar el mecanismo de funcionamiento del iRNA y su posible utilidad en el campo de la nefrología clínica y experimental. En esta aportación mantendremos las siglas en inglés, pues son las más frecuentemente utilizadas en la literatura y permiten evitar confusiones entre siglas traducidas de diferente forma. Estas siglas en inglés y su correspondiente traducción al español se detallan en la tabla 1. </p> <p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">¿Qué es el iRNA?</span></p> <p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"></span></p> <p class="elsevierStylePara">Antes del descubrimiento del iRNA, se había descrito en plantas un fenómeno denominado silenciamiento génico. En experimentos diseñados para potenciar el color de las petunias aumentando, mediante ingeniería genética, el número de copias del gen responsable de la síntesis del pigmento, se observó que se producía el efecto contrario, originándose una flor blanca<span class="elsevierStyleSup">1</span> (Figuras 1 y 2).</p> <p class="elsevierStylePara">En los años siguientes se describió este fenómeno en otras plantas transgénicas y en diferentes organismos modelo<span class="elsevierStyleSup">2</span>. Aunque se identificó que este efecto era producido por la inhibición de la expresión del gen que se intentaba potenciar y que el RNA tenía un papel fundamental en ello, la explicación molecular del proceso no se conoció hasta el descubrimiento de Fire y Mello. En 1998 estos investigadores estaban buscando un modo eficiente de silenciar genes como estrategia para estudiar su función en el desarrollo del nematodo <span class="elsevierStyleItalic">C. elegans.</span> Para ello, inyectaron moléculas de RNA complementario al mRNA del gen que querían silenciar (antisentido) en las células del gusano. Esta técnica era por lo general muy poco repetible y los efectos producidos muy modestos. En sus experimentos, ni el uso de la cadena antisentido ni el de la secuencia complementaria a éste (cadena sentido) produjeron efecto alguno. Inesperadamente, una mezcla de ambas cadenas, sentido y antisentido, en donde estas dos especies moleculares de cadena sencilla habían hibridado formando un RNA de doble cadena (dsRNA, de double stranded RNA), produjo la eliminación casi completa de la expresión del gen diana. En su artículo original, Fire y Mello demuestran que es posible el silenciamiento específico de un gen mediante la introducción en la célula de un dsRNA que contiene la secuencia homóloga. Además, proponen que este fenómeno es mediado por un mecanismo endógeno natural, que tiene como consecuencia la degradación del mRNA y que es usado por la célula para controlar la expresión génica. Finalmente, sugieren una conexión entre este mecanismo y el fenómeno descrito en plantas<span class="elsevierStyleSup">3</span>. La publicación de este estudio tuvo una excepcional repercusión en la comunidad científica. En menos de un año se documentó la presencia de iRNA en una gran diversidad de organismos modelo, incluyendo tripanosomas, varias especies de planarias, la mosca del vinagre (<span class="elsevierStyleItalic">Drosophyla melanogaster</span>)<span class="elsevierStyleSup">4,5</span>, y el pez-cebra (<span class="elsevierStyleItalic">Danio rerio</span>)<span class="elsevierStyleSup">6-8</span>. Los estudios en mamíferos sufrieron unos años de retraso debido a que la introducción de fragmentos de dsRNA mayores de 30 nucleótidos en estas células activa una reacción fisiológica que origina la muerte celular. Finalmente, el descubrimiento de que secuencias más cortas inducen iRNA sin producir toxicidad demostró la generalidad de este fenómeno entre los organismos eucariotas, siendo la única notable excepción la levadura <span class="elsevierStyleItalic">S. cerevisiae.</span> Además, las mutaciones en algunos genes requeridos para el funcionamiento del iRNA producen grandes defectos en el desarrollo, especialmente en tejidos germinales y proliferativos, sugiriendo un enlace entre esta vía y el desarrollo<span class="elsevierStyleSup">9-16</span>. </p> <p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">Silenciamiento endógeno</span></p> <p class="elsevierStylePara">El silenciamiento génico mediante iRNA es un proceso que ocurre en las células de manera natural. La conservación del silenciamiento por acción del iRNA es debida a la expresión de unos RNAs pequeños no codificantes llamados microRNAs (miRNAs). Estos miRNAs son críticos para el desarrollo normal y la fisiología de los tejidos en mamíferos. Además, en varios tipos de cáncer se ha demostrado que existe una pérdida de expresión de miRNAs sugiriendo que esta pérdida contribuye a la aparición de la enfermedad<span class="elsevierStyleSup">17,18</span>.</p> <p class="elsevierStylePara">Inicialmente los miRNAs se transcriben como precursores formados por una cadena de más de 2 kb de longitud presentando extensiones de bases que pueden sufrir emparejamiento o adoptar estructuras de horquilla (loop)<span class="elsevierStyleSup">19,20</span>. Además, en las regiones en las que hay un emparejamiento de bases pueden aparecer burbujas, que, junto con las estructuras en horquilla, son importantes, por una parte, para el reconocimiento de los miRNAs por las enzimas celulares y por otra, para la capacidad de esos RNAs para silenciar genes. Los transcritos primarios de miRNA son identificados y procesados en el núcleo por una RNasa III, llamada Drosha, dando lugar a precursores de aproximadamente 70 nt de longitud, conocidos como pre-miRNAs<span class="elsevierStyleSup">21</span>. Estos salen al citoplasma donde son rotos por una segunda RNasa III llamada Dicer. Dicer convierte los pre-miRNAs en miRNAs maduros de doble cadena de entre 21 y 23 nt de longitud<span class="elsevierStyleSup">22</span>. Estos miRNAs maduros se asocian con un complejo de silenciamiento inducido por mRNA (RISC, de RNA-induced silencing complex)<span class="elsevierStyleSup">23</span>. RISC desenrolla el miRNA y una cadena se asocia con la cadena complementaria del mRNA diana<span class="elsevierStyleSup">24</span>. Dependiendo del grado de homología entre un miRNA y su mRNA diana, los complejos miRNA-RISC inhiben la función génica por dos vías distintas<span class="elsevierStyleSup">25</span>: </p> <p class="elsevierStylePara">a) Si los miRNAs se emparejan imperfectamente se silencia la expresión del gen por represión de la traducción, o sea impidiendo que el mRNA se pueda leer por los ribosomas; </p> <p class="elsevierStylePara">b) Si los miRNAs presenten una secuencia idéntica al mRNA diana se inhibe la función génica por degradación del mRNA<span class="elsevierStyleSup">26,27</span>. </p> <p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Mecanismo de acción del iRNA</span></p> <p class="elsevierStylePara">En 1998, Fire y cols, acuñaron el término iRNA para referirse a un fenómeno de silenciamiento post-transcripcional de la expresión génica que ocurre en respuesta a la introducción de un dsRNA en una célula<span class="elsevierStyleSup">3</span>. Además diversos experimentos en <span class="elsevierStyleItalic">C. elegans</span> han demostrado que el iRNA puede propagarse de célula a célula de la misma manera que en el silenciamiento en plantas<span class="elsevierStyleSup">28</span>. Aunque este silenciamiento sistémico no se ha encontrado en mamíferos existen proteínas homólogas a las que se encuentran implicadas en el silenciamiento en nematodos.</p> <p class="elsevierStylePara">Los mecanismos bioquímicos implicados se han determinado en diferentes sistemas<span class="elsevierStyleSup">29</span> y parece que muchos de los pasos del proceso están bien conservados. Para demostrar que son los mRNAs maduros los que son interferidos se realizaron diversos estudios que demostraron que la secuencia primaria del DNA diana permanece inalterada, que la iniciación y elongación de la trascripción no parece estar afectada y que, mientras que los transcritos nucleares están presentes, los mRNA citoplasmáticos están completamente ausentes por lo que, al igual que en plantas, los mRNAs diana son degradados principalmente en el citoplasma<span class="elsevierStyleSup">30</span>.</p> <p class="elsevierStylePara">Se han determinado dos mecanismos de silenciamiento por iRNA: silenciamiento a través de RISC, y el silenciamiento a través de RNA-polimerasa dependiente de RNA (RdRP, de RNA-dependent RNA polymerase).</p> <p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">Silenciamiento a través de RISC</span></p> <p class="elsevierStylePara">Cuando en una célula aparecen dsRNAs, éstos son rotos, de manera dependiente de ATP, mediante una enzima llamada Dicer, en fragmentos de RNA de doble cadena más pequeños llamados RNAs de interferencia cortos <span class="elsevierStyleSup">22,29,31-33</span> (siRNAs, de <span class="elsevierStyleItalic">small interfering RNAs</span>). Se ha observado en <span class="elsevierStyleItalic">C.elegans</span> que Dicer interacciona con proteínas rde. Las proteínas rde se unen a los dsRNAs y se cree que se les presentan a Dicer para su procesamiento<span class="elsevierStyleSup">34</span>. Los mutantes que manifiestan un alto grado de resistencia al efecto del iRNA parece que poseen mutaciones en los genes que codifican las proteínas rde-1 y rde-4<span class="elsevierStyleSup">35</span>.</p> <p class="elsevierStylePara">Una vez que los siRNAs se forman, son incorporados dentro RISC que, una vez activado y de manera dependiente de ATP, desenrolla los siRNAs manteniendo la cadena antisentido del siRNA<span class="elsevierStyleSup">22,29,31,33,36</span>. Finalmente, el complejo RISC es guiado por la cadena antisentido del siRNA que reconoce el mRNA concreto con su secuencia complementaria. Una vez que está unido al mRNA, RISC lo rompe en un sitio localizado aproximadamente en el medio de la secuencia homóloga por lo que se produce su inactivación<span class="elsevierStyleSup">22 </span>(Figura3).</p> <p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">Silenciamiento a través de RdRP</span></p> <p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic"></span></p> <p class="elsevierStylePara">De manera alternativa al silenciamiento a través de RISC, puede existir un silenciamiento a través de RdRP. Existen varias teorías a cerca de este silenciamiento. Por un lado se piensa que, después de la rotura de los dsRNAs por Dicer, los siRNAs se pueden separar al ser poco estables. Una vez que las dos cadenas de RNA se han separado, la cadena antisentido se une a un mRNA de secuencia complementaria. Esta pequeña cadena actúa como ¿<span class="elsevierStyleItalic">primer¿</span> de una RdRP que sintetiza una cadena complementaria de RNA, de manera que se genera un dsRNA. Este dsRNA es roto en siRNA por la acción de la enzima Dicer pudiendo comenzar el proceso, bien por este tipo de silenciamiento o bien por silenciamiento a través de RISC. Generalmente los siRNAs son muy específicos, sin embargo la elongación de los siRNAs usando los mRNAs como molde puede llevar a una interferencia no específica por la aparición de secuencias homólogas a otros mRNAs, generando un iRNA transitorio. Este fenómeno es particular de plantas y nematodos. Otro modelo propueso es que tras el corte del mRNA por parte del complejo RISC, se produce un RNA aberrante (aRNA) que es utilizado por una RdRP para sintetizar la cadena complementaria obteniéndose de nuevo un dsRNA que puede ser cortado por Dicer. Esto puede llevarse a cabo porque las RdRPs pueden sintetizar RNA sin necesidad de un primer (figura 3). </p> <p class="elsevierStylePara">El descubrimiento de estas proteínas en el iRNA y el silenciamiento génico post-transcripcional proporciona una posible explicación para la alta eficacia de los dsRNAs en el silenciamiento, ya que solo se requieren unas pocas moléculas de dsRNA para degradar una gran población de mRNAs<span class="elsevierStyleSup">3</span>.</p> <p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">iRNA en mamíferos.</span></p> <p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"></span></p> <p class="elsevierStylePara">El silenciamiento en mamíferos mediante el iRNA parece ser llevado a cabo mediante RISC puesto que no se ha encontrado una proteína homóloga a la RdRP. Tampoco se ha detectado ningún sistema de iRNA transitorio en células de mamífero. Esto puede ser debido a que la introducción de grandes dsRNAs en células de mamífero produce una disminución de la transcripción y de la traducción, en parte debida a la activación de la proteína quinasa dependiente de dsRNA<span class="elsevierStyleSup">37</span> (PKR, de dsRNA activated protein kinase). La PKR activada fosforila la subunidad pequeña del factor de iniciación eucariota 2 alfa (eIF2α), disminuyendo la traducción. Además, PKR también promueve la síntesis de 2¿-5¿-ácido poliadenílico, que activa la RNasa L de forma no específica. Estos fenómenos colectivos pueden alterar drásticamente el metabolismo celular y generalmente activan vías de apoptosis<span class="elsevierStyleSup">38</span>. Esta respuesta al estrés podría haberse desarrollado como una defensa contra las infecciones virales de forma que se bloquea la replicación viral impidiendo la síntesis de proteínas y activando la apoptosis en las células infectadas<span class="elsevierStyleSup">39</span>.</p> <p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">FUTURO TERAPÉUTICO DEL iRNA</span></p> <p class="elsevierStylePara">La supresión de la expresión de genes por iRNA es generalmente un fenómeno transitorio<span class="elsevierStyleSup">40</span>. El silenciamiento génico en células de mamífero está limitado por el número de moléculas de siRNA que se introducen. El número de siRNAs decrece con el tiempo debido a la dilución que se produce cuando las células se dividen y a la degradación de las enzimas celulares. Una vez que los siRNAs son introducidos la expresión génica se recupera después de entre 96 y 120 horas, o de entre 3 y 5 divisiones celulares después de la transfección<span class="elsevierStyleSup">41</span>. Los primeros esfuerzos se enfocaron sobre la administración directa de siRNAs sintéticos en animales, desarrollando tres métodos principales que parecen ser los que más eficacia tienen: a) la inyección intravenosa de siRNAs, creando un ¿back-flow¿ en el sistema venoso, que fuerza a la solución del siRNA a introducirse en diversos órganos<span class="elsevierStyleSup">42,43</span>; b) la inyección de pequeños volúmenes de siRNAs empaquetados en liposomas catiónicos, observándose el silenciamiento en tejidos con un alto flujo sanguíneo<span class="elsevierStyleSup">44</span>; c) la electroporación de siRNAs directamente en tejidos y órganos<span class="elsevierStyleSup">45-48</span>.</p> <p class="elsevierStylePara">La solución para obtener un silenciamiento génico estable a través del iRNA ha sido el desarrollo de sistemas de expresión que producen siRNAs. Esto fue llevado a cabo por varios grupos<span class="elsevierStyleSup">41,49,50 </span>que utilizaron el promotor U6 o H1, para expresar una horquilla pequeña de RNA (shRNA, de small hairpin RNA). Los shRNAs pueden ser procesados por Dicer para producir siRNAs. Varios grupos han utilizado plásmidos basados en shRNAs para obtener un silenciamiento <span class="elsevierStyleItalic">in vivo</span> de mayor duración<span class="elsevierStyleSup">51</span>. También se han utilizado vectores virales para la expresión de shRNAs en las células. Así se han realizado estudios con retrovirus<span class="elsevierStyleSup">52-57</span>, lentivirus<span class="elsevierStyleSup">52,55,57,58</span>, adenovirus<span class="elsevierStyleSup">59-61</span> y virus asociados a adenovirus<span class="elsevierStyleSup">62,63</span>.</p> <p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"></span></p> <p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"></span></p> <p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Aplicaciones prácticas del iRNA </span></p> <p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"></span></p> <p class="elsevierStylePara">La tecnología derivada del iRNA ha revolucionado la forma en que podemos analizar la función de los genes. Ahora podemos llevar a cabo estudios de silenciamiento génico de una manera sencilla y eficiente. En ellos introducimos en las células dsRNAs o siRNAs diseñados artificialmente para silenciar un gen determinado. Esta tecnología representa una oportunidad única para identificar genes implicados en cualquier proceso biológico o enfermedad. Además, debido a su sencillez, estos estudios pueden ser realizados en miles de genes a la vez, dándonos una perspectiva global del problema biológico que se estudia. </p> <p class="elsevierStylePara">Por ejemplo, nosotros estamos estudiando el efecto que tiene el silenciamiento del gen de la endoglina, una molécula que parece regular el efecto profibrótico del factor de crecimiento transformante beta (TGF-beta), sobre la síntesis de matriz extracelular<span class="elsevierStyleSup">64</span>. Nuestros resultados preliminares parecen demostrar que el silenciamiento de endoglina con un siRNA específico modifica la producción de matriz extracelular por las células mesangiales (Patricia Álvarez-Muñoz y José M. Lopez-Novoa; resultados sin publicar). Asimismo, en un estudio en el que tratábamos de relacionar la expresión de endoglina con la regulación de la expresión de la ciclooxigenasa -2 (COX-2), la transfección de las células endoteliales con un siRNA para endoglina aumentó la expresión de COX-2 tanto en condiciones basales como en respuesta a TGF-beta1<span class="elsevierStyleSup">65</span>.</p> <p class="elsevierStylePara">Otro ejemplo de un trabajo muy recientemente publicado en Kidney International, escogido entre muchos trabajos del mismo tipo, demuestra que el silenciamiento con siRNA del gen ELMO1 (de engulfment and cell motility 1), un gen de susceptibilidad a la nefropatía diabética y que se hiperexpresa en diversos modelos animales de fibrosis renal, suprimía la expresión de fibronectina que se observaba en células que expresan este gen, sugiriendo que la expresión de ELMO1 contribuye al desarrollo y progresión de la nefropatía diabética a través de la alteración de la síntesis de matriz extracelular<span class="elsevierStyleSup">66</span>. Otro ejemplo es un trabajo muy reciente publicado en American Journal of Transplantation en el que demuestran que el silenciamiento con siRNA de C3, el componente central de todas las vías de activación del complemento, es efectivo inhibiendo la expresión de C3 en un modelo de isquemia/reperfusión renal experimental en ratón, reduciendo el daño renal, la producción del factor de necrosis tumoral alfa (tumoral necrosis factor alpha; TNF-alpha ) y la mortalidad inducida por la isquemia/reperfusión. Los autores sugieren que el uso del siRNA representa una nueva posibilidad terapéutica en la necrosis tubular aguda o en la preservación de órganos para trasplante<span class="elsevierStyleSup">67</span>. </p> <p class="elsevierStylePara">Aparte de su incuestionable relevancia como herramienta de investigación, esta tecnología está empezando a ser aplicada a la terapia. Así, se trabaja para que en un futuro pueda usarse para silenciar, por ejemplo, genes alterados en enfermedades tumorales<span class="elsevierStyleSup">68</span>, o genes virales en pacientes con infecciones víricas. Inhibiendo la expresión de genes virales involucrados en la replicación, es posible inhibir ésta dentro de las células y, por lo tanto, la capacidad de los virus para multiplicarse, lisar las células e invadir otras. Hay varios estudios que describen el uso del iRNA para inhibir la replicación del VIH-1 y del virus de la hepatitis B<span class="elsevierStyleSup">69-72</span>. Giladi y cols (2003)<span class="elsevierStyleSup">73</span> describieron el uso de los siRNA para silenciar tres secuencias diferentes de mRNA <span class="elsevierStyleItalic">in vivo </span>en ratones infectados con el virus de la hepatitis B<span class="elsevierStyleItalic">.</span> Los resultados oscilaron entre inhibiciones del 60% al 90% dependiendo de las secuencias de siRNA utilizadas y la proteína silenciada. También se la planteado el uso del iRNA contra la infección por el virus de la hepatitis C<span class="elsevierStyleSup">74,75</span>.</p> <p class="elsevierStylePara">Otra diana terapéutica (entre las muchas posibles) son los genes causantes de los niveles elevados de colesterol en sangre. En relación con esto, se ha publicado recientemente en Nature que el silenciamiento del gen de la apolipoproteina B (ApoB) in primates mediante la inyección intravenosa de siRNAs específicos para ApoB y encapsulados en partículas estables un complejo ácidos nucleicos-lípidos, dio lugar a reducciones significativas en los niveles circulantes de ApoB, colesterol y LDL, que se observaron desde 24 horas después de la inyección hasta 11 días después, lo que demuestra la eficacia y la larga duración de este tipo de tratamiento en animales muy parecidos al hombre<span class="elsevierStyleSup">76</span>.</p> <p class="elsevierStylePara">En modelos animales de insuficiencia hepática aguda debida a inducción de la apoptosis de los hepatocitos por agonistas de Fas, el tratamiento con siRNA contra el gen de Fas protegió a los animales contra la hepatitis fulminante<span class="elsevierStyleSup">77</span>. Aunque no conozcamos que se hayan publicado hasta la fecha estudios clínicos rigurosos basados en la terapia génica, hay compañías como ¿siRNA Therapeutics¿ y ¿Alnylam Pharmaceuticals¿ que están realizando estudios clínicos preliminaries desde el año 2005<span class="elsevierStyleSup">78</span>. </p> <p class="elsevierStylePara">En resumen, el descubrimiento del iRNA ha expandido enormemente el conocimiento científico sobre los mecanismos implicados en la regulación génica. Además, el desarrollo de tecnologías basadas en el iRNA nos ha equipado a los investigadores con poderosísimas herramientas experimentales para estudiar la función génica. La adaptación de esta tecnología a la terapia de diferentes tipos de patologías, aunque aún en desarrollo, ha abierto expectativas terapéuticas sin precedentes.</p> <p class="elsevierStylePara">Agradecimientos</p> <p class="elsevierStylePara">Patricia Álvarez-Muñoz es becaria FPU del Ministerio de Educación y Ciencia Los estudios de nuestro laboratorio han sido financiados por el proyecto BFU2004-00285 del Ministerio de Educación y Ciencia y SA22/03 de la Junta de Castilla y Leon</p> <p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">BIBLIOGRAFÍA</span></p> <p class="elsevierStylePara">1. <a href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?cmd=Retrieve&db=pubmed&dopt=Abstract&list_uids=12354959&query_hl=17" class="elsevierStyleCrossRefs">Napoli C, Lemieux C, Jorgensen R</a>: Introduction of a Chimeric Chalcone Synthase Gene into Petunia Results in Reversible Co-Suppression of Homologous Genes in trans. <span class="elsevierStyleItalic">Plant Cell</span> Apr;2: 279-289, 1990. </p> <p class="elsevierStylePara">2. <a href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?cmd=Retrieve&db=pubmed&dopt=Abstract&list_uids=8843939&query_hl=26" class="elsevierStyleCrossRefs">Jorgensen RA, Cluster PD, English J, Que Q, Napoli CA</a>: Chalcone synthase cosuppression phenotypes in petunia flowers: comparison of sense vs. antisense constructs and single-copy vs. complex T-DNA sequences. <span class="elsevierStyleItalic">Plant Mol Biol</span> Aug;31: 957-73, 1993.</p> <p class="elsevierStylePara">3. 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Fenotipos de las flores de los diferentes clones transgénicos obtenidos y variaciones de la coloración de las flores dentro de una única planta (Obtenido de referencia 1).</p> <p class="elsevierStylePara">Figura 3. Esquema del mecanismo de acción del iRNA.</p> <br /> <p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">TABLA 1. </span>Principales términos mencionados en el artículo con sus respectivos significados.<span class="elsevierStyleBold"></span></p> <table > <tbody > <tr > <td width="87" > <p class="elsevierStylePara">iRNA</p></td> <td width="213" > <p class="elsevierStylePara">Interference RNA</p></td> <td width="198" > <p class="elsevierStylePara">RNA de interferencia</p></td> </tr> <tr > <td width="87" > <p class="elsevierStylePara">dsRNA</p></td> <td width="213" > <p class="elsevierStylePara">Doubled Stranded RNA</p></td> <td width="198" > <p class="elsevierStylePara">RNA de doble cadena</p></td> </tr> <tr > <td width="87" > <p class="elsevierStylePara">miRNA</p></td> <td width="213" > <p class="elsevierStylePara">microRNA</p></td> <td width="198" > <p class="elsevierStylePara">microRNA</p></td> </tr> <tr > <td width="87" > <p class="elsevierStylePara">RISC</p></td> <td width="213" > <p class="elsevierStylePara">RNA-induced silencing complex</p></td> <td width="198" > <p class="elsevierStylePara">Complejo de silenciamiento inducido por mRNA</p></td> </tr> <tr > <td width="87" > <p class="elsevierStylePara">RdRP</p></td> <td width="213" > <p class="elsevierStylePara">RNA-dependent RNA polymerase</p></td> <td width="198" > <p class="elsevierStylePara">RNA polimerasa dependiente de RNA</p></td> </tr> <tr > <td width="87" > <p class="elsevierStylePara">siRNA</p></td> <td width="213" > <p class="elsevierStylePara">Small Interfering RNA</p></td> <td width="198" > <p class="elsevierStylePara">RNA de interferencia corto</p></td> </tr> <tr > <td width="87" > <p class="elsevierStylePara">aRNA</p></td> <td width="213" > <p class="elsevierStylePara">Aberrant RNA</p></td> <td width="198" > <p class="elsevierStylePara">RNA aberrante</p></td> </tr> <tr > <td width="87" > <p class="elsevierStylePara">shRNA</p></td> <td width="213" > <p class="elsevierStylePara">Small hairpin RNA</p></td> <td width="198" > <p class="elsevierStylePara">Horquilla pequeña de RNA</p></td> </tr> </tbody> </table> <p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"></span></p> <p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"></span></p> <p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"></span></p>" "pdfFichero" => "P1-E258-S123-A4596.pdf" "tienePdf" => true "PalabrasClave" => array:1 [ "es" => array:1 [ 0 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Palabras clave" "identificador" => "xpalclavsec430497" "palabras" => array:1 [ 0 => "ARN de interferencia, silenciamiento génico," ] ] ] ] ] "idiomaDefecto" => "es" "url" => "/02116995/0000002700000003/v0_201502091326/X0211699507021292/v0_201502091326/es/main.assets" "Apartado" => array:4 [ "identificador" => "35362" "tipo" => "SECCION" "es" => array:2 [ "titulo" => "Editoriales" "idiomaDefecto" => true ] "idiomaDefecto" => "es" ] "PDF" => "https://static.elsevier.es/multimedia/02116995/0000002700000003/v0_201502091326/X0211699507021292/v0_201502091326/es/P1-E258-S123-A4596.pdf?idApp=UINPBA000064&text.app=https://revistanefrologia.com/" "EPUB" => "https://multimedia.elsevier.es/PublicationsMultimediaV1/item/epub/X0211699507021292?idApp=UINPBA000064" ]
Información del artículo
ISSN: 02116995Idioma original: Español
Datos actualizados diariamente
| año/Mes | Html | Total | |
|---|---|---|---|
| 2024 Noviembre | 30 | 12 | 42 |
| 2024 Octubre | 281 | 63 | 344 |
| 2024 Septiembre | 186 | 53 | 239 |
| 2024 Agosto | 148 | 67 | 215 |
| 2024 Julio | 141 | 36 | 177 |
| 2024 Junio | 193 | 67 | 260 |
| 2024 Mayo | 265 | 78 | 343 |
| 2024 Abril | 261 | 56 | 317 |
| 2024 Marzo | 275 | 44 | 319 |
| 2024 Febrero | 215 | 60 | 275 |
| 2024 Enero | 182 | 32 | 214 |
| 2023 Diciembre | 221 | 38 | 259 |
| 2023 Noviembre | 252 | 48 | 300 |
| 2023 Octubre | 310 | 51 | 361 |
| 2023 Septiembre | 300 | 46 | 346 |
| 2023 Agosto | 201 | 27 | 228 |
| 2023 Julio | 150 | 62 | 212 |
| 2023 Junio | 181 | 41 | 222 |
| 2023 Mayo | 177 | 46 | 223 |
| 2023 Abril | 140 | 27 | 167 |
| 2023 Marzo | 188 | 36 | 224 |
| 2023 Febrero | 184 | 42 | 226 |
| 2023 Enero | 196 | 49 | 245 |
| 2022 Diciembre | 100 | 48 | 148 |
| 2022 Noviembre | 180 | 39 | 219 |
| 2022 Octubre | 169 | 53 | 222 |
| 2022 Septiembre | 184 | 49 | 233 |
| 2022 Agosto | 143 | 56 | 199 |
| 2022 Julio | 116 | 59 | 175 |
| 2022 Junio | 141 | 38 | 179 |
| 2022 Mayo | 142 | 45 | 187 |
| 2022 Abril | 111 | 75 | 186 |
| 2022 Marzo | 158 | 67 | 225 |
| 2022 Febrero | 164 | 57 | 221 |
| 2022 Enero | 135 | 55 | 190 |
| 2021 Diciembre | 97 | 46 | 143 |
| 2021 Noviembre | 145 | 47 | 192 |
| 2021 Octubre | 152 | 54 | 206 |
| 2021 Septiembre | 130 | 57 | 187 |
| 2021 Agosto | 93 | 52 | 145 |
| 2021 Julio | 90 | 34 | 124 |
| 2021 Junio | 123 | 39 | 162 |
| 2021 Mayo | 114 | 39 | 153 |
| 2021 Abril | 175 | 58 | 233 |
| 2021 Marzo | 187 | 45 | 232 |
| 2021 Febrero | 141 | 26 | 167 |
| 2021 Enero | 149 | 25 | 174 |
| 2020 Diciembre | 150 | 16 | 166 |
| 2020 Noviembre | 159 | 27 | 186 |
| 2020 Octubre | 105 | 28 | 133 |
| 2020 Septiembre | 148 | 13 | 161 |
| 2020 Agosto | 101 | 22 | 123 |
| 2020 Julio | 122 | 20 | 142 |
| 2020 Junio | 110 | 20 | 130 |
| 2020 Mayo | 182 | 40 | 222 |
| 2020 Abril | 248 | 38 | 286 |
| 2020 Marzo | 237 | 42 | 279 |
| 2020 Febrero | 173 | 27 | 200 |
| 2020 Enero | 162 | 25 | 187 |
| 2019 Diciembre | 150 | 19 | 169 |
| 2019 Noviembre | 184 | 33 | 217 |
| 2019 Octubre | 209 | 22 | 231 |
| 2019 Septiembre | 198 | 23 | 221 |
| 2019 Agosto | 130 | 21 | 151 |
| 2019 Julio | 108 | 14 | 122 |
| 2019 Junio | 96 | 11 | 107 |
| 2019 Mayo | 75 | 17 | 92 |
| 2019 Abril | 120 | 57 | 177 |
| 2019 Marzo | 66 | 25 | 91 |
| 2019 Febrero | 33 | 17 | 50 |
| 2019 Enero | 44 | 11 | 55 |
| 2018 Diciembre | 75 | 25 | 100 |
| 2018 Noviembre | 125 | 24 | 149 |
| 2018 Octubre | 93 | 8 | 101 |
| 2018 Septiembre | 71 | 26 | 97 |
| 2018 Agosto | 45 | 13 | 58 |
| 2018 Julio | 26 | 12 | 38 |
| 2018 Junio | 41 | 15 | 56 |
| 2018 Mayo | 61 | 6 | 67 |
| 2018 Abril | 52 | 13 | 65 |
| 2018 Marzo | 46 | 13 | 59 |
| 2018 Febrero | 27 | 2 | 29 |
| 2018 Enero | 36 | 9 | 45 |
| 2017 Diciembre | 36 | 6 | 42 |
| 2017 Noviembre | 43 | 10 | 53 |
| 2017 Octubre | 30 | 8 | 38 |
| 2017 Septiembre | 20 | 7 | 27 |
| 2017 Agosto | 34 | 10 | 44 |
| 2017 Julio | 28 | 19 | 47 |
| 2017 Junio | 45 | 8 | 53 |
| 2017 Mayo | 58 | 11 | 69 |
| 2017 Abril | 88 | 8 | 96 |
| 2017 Marzo | 72 | 21 | 93 |
| 2017 Febrero | 31 | 1 | 32 |
| 2017 Enero | 22 | 7 | 29 |
| 2016 Diciembre | 75 | 6 | 81 |
| 2016 Noviembre | 78 | 13 | 91 |
| 2016 Octubre | 94 | 15 | 109 |
| 2016 Septiembre | 134 | 6 | 140 |
| 2016 Agosto | 188 | 5 | 193 |
| 2016 Julio | 150 | 7 | 157 |
| 2016 Junio | 136 | 0 | 136 |
| 2016 Mayo | 134 | 0 | 134 |
| 2016 Abril | 102 | 0 | 102 |
| 2016 Marzo | 86 | 0 | 86 |
| 2016 Febrero | 111 | 0 | 111 |
| 2016 Enero | 105 | 0 | 105 |
| 2015 Diciembre | 110 | 0 | 110 |
| 2015 Noviembre | 131 | 0 | 131 |
| 2015 Octubre | 107 | 0 | 107 |
| 2015 Septiembre | 75 | 0 | 75 |
| 2015 Agosto | 71 | 0 | 71 |
| 2015 Julio | 72 | 0 | 72 |
| 2015 Junio | 48 | 0 | 48 |
| 2015 Mayo | 88 | 0 | 88 |
| 2015 Abril | 30 | 0 | 30 |
| 2015 Febrero | 1120 | 0 | 1120 |
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