se ha leído el artículo
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tratados con paricalcitol con respecto a los niveles basales.</p> <p id="spar0055" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">U.A.: unidades arbitrarias.</p> <p id="spar0060" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">**<span class="elsevierStyleItalic">p</span><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span><<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,01.</p> <p id="spar0065" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">***<span class="elsevierStyleItalic">p</span><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span><<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,001.</p>" ] ] ] "autores" => array:1 [ 0 => array:2 [ "autoresLista" => "Javier Donate-Correa, Fernando Henríquez-Palop, Ernesto Martín-Núñez, Carolina Hernández-Carballo, Carla Ferri, Nayra Pérez-Delgado, Mercedes Muros-de-Fuentes, Carmen Mora-Fernández, Juan F. 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No se observaron diferencias en la expresión de ICAM-1 entre las diferentes muestras. Con relación a la expresión de ROS, cuando las células se cultivaron con líquidos con acetato se observaron diferencias significativas respecto al control y a las células tratadas con líquidos cont citrato (*p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span><<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,05).</p>" ] ] ] "textoCompleto" => "<span class="elsevierStyleSections"><span id="sec0005" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0055">Introducción</span><p id="par0005" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Las máquinas de hemodiálisis (HD) son capaces de producir un líquido de diálisis (LD) que contiene sales de calcio y magnesio y, al mismo tiempo, bicarbonato. Para mantener la solubilidad de esas sales es necesario añadir un ácido que mantenga un pH concreto, entre 7,1 y 7,6<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0145"><span class="elsevierStyleSup">1</span></a>. El que se ha venido añadiendo al LD es el ácido acético, generalmente en concentraciones de 3 o 4<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L. El paso del ácido acético a acetil-coenzima-A y su metabolización en el círculo del ácido cítrico produce de forma equimolar bicarbonato. En la HD con bicarbonato y 3-4<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L de acetato, hasta un 25% de la alcalinización que se produce proviene del acetato. En la mayoría de los pacientes la acetatemia se incrementa durante la sesión de HD, dado que la transferencia de acetato del LD a la sangre es superior a la capacidad de su metabolización en el organismo. Este aumento de la acetatemia es mayor con técnicas de alta eficacia, como la hemodiafiltración en línea (HDF-OL)<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0150"><span class="elsevierStyleSup">2</span></a>, y también es mayor en las personas con menor capacidad de metabolizar acetato, por ejemplo, personas con menor masa muscular, edad avanzada o insuficiencia hepática<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0155"><span class="elsevierStyleSup">3</span></a>.</p><p id="par0010" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El incremento de la acetatemia durante la sesión de HD se ha asociado a una serie de alteraciones: aumento del estrés oxidativo, de las citocinas proinflamatorias y de la síntesis de óxido nítrico<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0160"><span class="elsevierStyleSup">4-8</span></a>. Hasta un 50% de los pacientes en HD presentan una situación de inflamación crónica de bajo grado. La hiperacetatemia sería un coadyuvante de esta situación, junto a la exposición a sustancias pirogénicas o a materiales bioincompatibles. La hiperacetatemia se ha asociado a la intolerancia hemodinámica a las HD<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0185"><span class="elsevierStyleSup">9</span></a>.</p><p id="par0015" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Por lo anterior, se ha intentado sustituir el acetato del LD por otro ácido, o eliminarlo sin más. Esto último se logró mediante la técnica de hemodiafiltración denominada, «acetate free biofiltration» (AFB), en la que el LD no contiene acetato ni bicarbonato, y este se infunde de manera intravenosa. La retirada del acetato en la AFB implicaba que desapareciera la activación de los polimorfonucleares y monocitos<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0190"><span class="elsevierStyleSup">10</span></a> o el aumento de la síntesis de óxido nítrico<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0170"><span class="elsevierStyleSup">6</span></a>. Por otro lado, el acetato se ha logrado sustituir en el LD por ácido clorhídrico o cítrico<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0180"><span class="elsevierStyleSup">8,11,12</span></a>.</p><p id="par0020" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El ácido cítrico puede jugar un papel alternativo al acetato como estabilizante del LD. El citrato, en comparación con el acetato, tiene un patrón diferente en cuanto a la activación leucocitaria y del complemento<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0205"><span class="elsevierStyleSup">13</span></a>. El citrato como anticoagulante regional (RCA) en HD, respecto a la heparina, ha demostrado efectos favorables sobre la inflamación<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0210"><span class="elsevierStyleSup">14-16</span></a>, bien es verdad que las concentraciones de citrato en la RCA son sustancialmente mayores que las de los LD con citrato. En una HD con 1<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L de citrato en el LD, la sangre que retorna al paciente tiene una concentración de 0,58<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L, mientras que la normal es 0,1<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L. Al cabo de 4 h de HD, la concentración sistémica de citrato estaría en 0,25-0,3<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0225"><span class="elsevierStyleSup">17</span></a>. Con 0,8<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L de citrato en el LD, la citratemia al final de la HD estaría entre 0,2 y 0,25<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L, en HDF-OL llegaría a 0,3<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0225"><span class="elsevierStyleSup">17</span></a>. En estas concentraciones, y respecto al acetato, se reduciría la activación del complemento y de los granulocitos<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0205"><span class="elsevierStyleSup">13</span></a>. La HDF-OL con citrato lograría niveles más bajos de PCR y β2-microglobulina respecto a la de acetato<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0225"><span class="elsevierStyleSup">17</span></a>.</p><p id="par0025" class="elsevierStylePara elsevierViewall">En los trabajos referidos, es difícil separar los efectos beneficiosos sobre la inflamación de la retirada del acetato del LD de los de la inclusión del citrato.</p><p id="par0030" class="elsevierStylePara elsevierViewall">En la actualidad disponemos de 2<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>tipos de LD con citrato. El primero contiene 1<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L de citrato y no contiene acetato; el segundo lleva 0,8<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L de citrato y 0,3<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L de acetato. El LD estándar de HD que utilizamos contiene 3 o 4<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L de acetato.</p><p id="par0035" class="elsevierStylePara elsevierViewall">En este trabajo hemos querido valorar <span class="elsevierStyleItalic">in vitro</span> el estrés oxidativo, las moléculas de adhesión y las micropartículas totales en las células de pacientes urémicos expuestas a LD solo con citrato, con citrato<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>+<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>acetato y solo con acetato, en concentraciones de 3 o 4<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L. El objetivo de este estudio es comparar el acetato con el citrato en el LD respecto a su efecto inflamatorio en las células inmunocompetentes de la sangre.</p></span><span id="sec0010" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0060">Material y métodos</span><p id="par0040" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El efecto del acetato y del citrato fue investigado en sangre completa de pacientes urémicos y controles sanos <span class="elsevierStyleItalic">in vitro</span>. La sangre se extrajo de pacientes que no habían recibido medicación antiinflamatoria en los días anteriores.</p><span id="sec0015" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0065">Tipos de muestras de sangre</span><p id="par0045" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Se obtuvieron 2 <span class="elsevierStyleItalic">pool</span> de sangre conservada en el biobanco de la RED de Investigación Renal (REDinREN, Madrid). El primer <span class="elsevierStyleItalic">pool</span> corresponde a sangre de 12 pacientes con enfermedad renal crónica (ERC) en HD: en estos se han hecho 3 experimentos y los resultados de cada experimento son la media de 3 pocillos. El otro <span class="elsevierStyleItalic">pool</span> procede de 4<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>controles sanos, con características semejantes de edad (media de 60 años), y género (50% hombres). Dos de los pacientes de HD eran diabéticos. Las muestras de sangre se extrajeron pre-HD. Con estas muestras se han hecho 3 experimentos y los datos son la media de 3 pocillos.</p></span><span id="sec0020" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0070">Líquidos de hemodiálisis</span><p id="par0050" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Se fabricó líquido de HD (LD) de 4<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>tipos:</p><p id="par0055" class="elsevierStylePara elsevierViewall">- El LD 1, con 1<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L de citrato y libre de acetato: SelectBag Citrate® producido en máquinas de HD AK200-ultra-S.</p><p id="par0060" class="elsevierStylePara elsevierViewall">- El LD 2, con 0,8<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L de citrato y 0,3<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L de acetato: Citrasate® 323<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>C producido en Sistemas Terapéuticos 5008 FMC®.</p><p id="par0065" class="elsevierStylePara elsevierViewall">- El LD 3, con 3<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L de acetato sin citrato: SoftPac® producido en máquinas de HD AK200-ultra-S.</p><p id="par0070" class="elsevierStylePara elsevierViewall">- El LD 4, con 4<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L de acetato sin citrato: producido en Sistemas Terapéuticos 5008 FMC®.</p><p id="par0075" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La composición de los LD utilizados se muestra en la <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#tbl0005">tabla 1</a>. Se ordenan de menor a mayor concentración de acetato en el LD. El LD cumple las características de LD ultrapuro<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0230"><span class="elsevierStyleSup">18</span></a>. Las muestras se tomaron del hansen a la entrada del dializador, una vez que la máquina se había estabilizado (conductividades y temperatura). Las muestras se manejaron de forma estanca.</p><elsevierMultimedia ident="tbl0005"></elsevierMultimedia></span><span id="sec0025" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0075">Cultivo de monocitos humanos (THP-1)</span><p id="par0080" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Las monocitos humanos (células THP-1; línea celular THP-1, Sigma, n.° de catálogo 88081201) fueron cultivados en el medio RPMI 1640 con el 10% de penicilina-estreptomicina, ambos suministrados por Lonza (Basilea, Suiza) y al 10% de suero fetal bovino FBS de Sigma (St. Louis, Estados Unidos).</p></span><span id="sec0030" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0080">Células mononucleares de sangre periférica</span><p id="par0085" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Las células mononucleares de sangre periférica (PBMC) se obtuvieron a partir de 10<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>ml de sangre recogida en tubos de EDTA mediante gradiente de densidad utilizando Lymphocytes Isolation Solution (Rafer, Zaragoza, España).</p></span><span id="sec0035" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0085">Determinación de moléculas de adhesión</span><p id="par0090" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Se determinaron moléculas de adhesión (<span class="elsevierStyleItalic">intercellular adhesion molecule 1</span>, CD54/ICAM-1) tanto en células THP-1 como en PBMC siguiendo el mismo protocolo.</p><p id="par0095" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Las células se sembraron a una densidad de 10<span class="elsevierStyleSup">6</span> células/ml en placas de 6 pocillos (Nunclon™ Delta, NUNC® Thermo Fisher Scientific, Waltham, Massachusetts, Estados Unidos). Se incubaron durante la noche con los distintos LD y utilizando un <span class="elsevierStyleItalic">buffer</span> salino tamponado en fosfato (PBS, Sigma, Sant Louis, Missouri, Estados Unidos) como control. La determinación de moléculas de adhesión se realizó mediante técnicas de inmunofluorescencia utilizando el anticuerpo monoclonal MEM-111 conjugado con FITC frente a la molécula CD54, adquirido en Thermo Fisher Scientific (Waltham, Massachusetts, Estados Unidos). Se utilizó el citómetro de flujo FACSCalibur de Becton Dickinson (San José, California, Estados Unidos) y el <span class="elsevierStyleItalic">software</span> Cyflogic para analizar el canal medio de fluorescencia.</p></span><span id="sec0040" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0090">Cuantificación de los niveles de especies reactivas de oxígeno</span><p id="par0100" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La medida de la actividad de las especies reactivas de oxígeno (ROS) se realizó mediante el método descrito por Wang y Josep (Wang y Joseph, 1999) que se basa en la fluorescencia emitida por la 2′,7′diclorodihidrofluoresceína al oxidarse en 2′,7¿diclorofluoresceína.</p><p id="par0105" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Las PBMC fueron sembradas en placas de 6 pocillos a una densidad del 10<span class="elsevierStyleSup">6</span> células/ml. Las células fueron tratadas con los correspondientes líquidos durante la noche. Transcurrido este tiempo, las células se lavaron con solución salina tamponada con fosfato PBS (Sigma, Sant Louis, Missouri, Estados Unidos) y se incubaron a una concentración de 5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>μM de H2DCFDA (Thermo Fisher Scientific, Waltham, Massachusetts, Estados Unidos) en medio fresco durante 30 min. El análisis se realizó por citometría de flujo FACSCalibur (Becton Dickinson) y se analizó el canal medio de florescencia con el <span class="elsevierStyleItalic">software</span> Cyflogic.</p></span><span id="sec0045" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0095">Cuantificación de microvesículas</span><p id="par0110" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Las microvesículas se cuantificaron en el sobrenadante recogido del cultivo de las PBMC tratadas con los distintos líquidos durante la noche. Una alícuota fue marcada con annexin V conjugada con FITC suministrada por Becton Dickinson. El análisis se realizó mediante citometría de flujo FACSCalibur (Becton Dickinson). Primero se seleccionó la población de microvesículas en función del tamaño (FSC/<span class="elsevierStyleItalic">forward scatter</span>) y complejidad (SSC/<span class="elsevierStyleItalic">side scatter</span>) utilizando el kit Flow Cytometry Sub-Micron Size Reference Kit, Green Fluorescent (Life Technologies, Paisley, Estados Unidos) como referencia y, a continuación, se seleccionaron las microvesículas anexina V positivas. Para poder cuantificar la concentración de microvesículas se utilizó un número conocido de microesferas de látex <span class="elsevierStyleItalic">flow count</span> (Beckman Coulter, Brea, California, Estados Unidos).</p></span><span id="sec0050" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0100">Unidades de los resultados y estadística</span><p id="par0115" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Al determinar la expresión de moléculas de adhesión, o niveles de ROS en las células PBMC, se observaron niveles basales muy variables, por lo que decidimos expresar los resultados atribuyendo un valor arbitrario de uno a la muestra control, y determinando el incremento o decremento respecto a este valor cuando las células eran cultivadas en presencia de los diferentes líquidos objeto del estudio. Las unidades son tantos por uno o veces el control.</p><p id="par0120" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los resultados se expresan como la media<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>±<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>DE de los experimentos; cada uno realizado por triplicado. Se empleó el análisis de varianza de un paso para comparar los resultados de los 5 grupos, en cada una de las pruebas; previamente, se realizó el test de Levene. Si era necesario, se recurrió a una prueba no paramétrica: Kruskal-Wallis. Para la comparación entre 2<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>de los grupos entre sí se utilizó la t de Student pareada o el test de Mann-Whitney, según correspondía. Se consideró como significativa una p < 0,05. El análisis estadístico se realizó con el paquete SPSS 15.0 Inc. (Chicago, Illinois, Estados Unidos).</p></span></span><span id="sec0055" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0105">Resultados</span><span id="sec0060" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0110">Caracterización de la activación de la línea monocitaria THP-1 inducida por los diferentes líquidos de diálisis</span><p id="par0125" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los estudios realizados sobre la expresión de la molécula de adhesión (ICAM-1) en la línea celular monocitaria THP-1 mostraron que los LD que contenían acetato (L3 y L4) indujeron un incremento en la densidad de expresión de ICAM-1 en las células THP-1 (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0005">fig. 1</a>). El canal medio de fluorescencia para la molécula mostró un incremento de 2,61<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>±<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,79 y 2,97<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>±<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,81 veces, respectivamente, para L3 y L4 respecto a la densidad media observada en las células control (1<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>±<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,11). Por el contrario, los líquidos que contenían citrato (L1 y L2) no modificaron la expresión de ICAM-1 en células THP-1 (canal medio de fluorescencia de 0,73<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>±<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,27 y 0,86<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>±<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,23, respectivamente para L1 y L2).</p><elsevierMultimedia ident="fig0005"></elsevierMultimedia></span><span id="sec0065" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0115">Activación de células inmunocompetentes de sujetos sanos</span><p id="par0130" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Como puede observarse en la <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0010">figura 2</a>, en la expresión de ICAM-1, no se observaron diferencias significativas respecto al control cuando las células fueron cultivadas con los diferentes líquidos. Sin embargo, al comparar la expresión en células cultivadas con líquidos que contenían citrato (L1 y L2) y la de los líquidos que contenían solo acetato (L3 y L4), sí observamos un incremento en la expresión de ICAM-1 inducida por los líquidos con acetato.</p><elsevierMultimedia ident="fig0010"></elsevierMultimedia><p id="par0135" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El estudio de la expresión de ROS como indicador de estrés oxidativo reveló que los líquidos con acetato indujeron mayor actividad que los líquidos que contenían citrato. Como se puede ver en la <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0010">figura 2</a>, los líquidos L3 y L4 indujeron una actividad significativamente mayor de ROS en PBMC vs. control (p < 0,05), y en las células tratadas con L1 y L2 (p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span><<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,05).</p><p id="par0140" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Al igual que ocurría en las determinaciones de ROS, los líquidos L3 y L4 indujeron un incremento en la producción de microvesículas (Δ<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span><span class="elsevierStyleMonospace">=</span><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>2,73<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>±<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,62 y 2,84<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>±<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,59, respectivamente, respecto al control, p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span><<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,01) (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0015">fig. 3</a>). Sin embargo, no se observaron diferencias en las células cultivadas con los líquidos L1 y L2 (Δ<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span><span class="elsevierStyleMonospace">=</span><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,94<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>±<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,233 y 1,19<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>±<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,31, respectivamente, respecto al control).</p><elsevierMultimedia ident="fig0015"></elsevierMultimedia></span><span id="sec0070" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0120">Activación de células inmunocompetentes de sujetos con insuficiencia renal crónica</span><p id="par0145" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Encontramos un paralelismo entre lo observado en las células de sujetos sanos y lo observado en las células de enfermos en lo referente a expresión de ROS, o producción de microvesículas. Como se recoge en la <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0020">figura 4</a>, al igual que ocurría en las células de sujetos sanos, los líquidos que contenían acetato indujeron mayor actividad ROS (p < 0,005, vs. control y células tratadas con L1 y L2); o en la producción de microvesículas (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0015">fig. 3</a>). Mientras que el incremento en el número de microvesículas con L1 y L2 fue de 0,16<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>±<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,61 y 0,21<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>±<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,48, respectivamente, respecto al control (ns), con L3 y L4 se observó un incremento de 1,73<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>±<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,46 y 1,82<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>±<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,29 (p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span><<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,05).</p><elsevierMultimedia ident="fig0020"></elsevierMultimedia></span></span><span id="sec0075" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0125">Discusión</span><p id="par0150" class="elsevierStylePara elsevierViewall">En este estudio <span class="elsevierStyleItalic">in vitro</span> el acetato, en concentraciones de 3 y 4<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L en el LD, induce en las células inmunocompetentes de la sangre un aumento de ICAM-1, ROS y microvesículas circulantes. El citrato no induce esa respuesta inflamatoria.</p><p id="par0155" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Entre un 50 y un 60% de los pacientes en HD presentan un estado de inflamación crónica de bajo grado, que se ha relacionado con la desnutrición, amiloidosis, ateroesclerosis, susceptibilidad a las infecciones y con la elevada morbimortalidad de estos pacientes<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0235"><span class="elsevierStyleSup">19,20</span></a>. Esta situación inflamatoria crónica es multifactorial: en parte se debe a la uremia y en parte a factores propios de la técnica de diálisis<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0245"><span class="elsevierStyleSup">21-23</span></a>. Entre los factores proinflamatorios propios de la HD está la presencia de acetato en el LD en una concentración de 20 a 40 veces superiror a la del plasma. La transferencia de acetato al paciente durante la HD se ha asociado a aumento del estrés oxidativo, de las citocinas proinflamatorias y de la síntesis de óxido nítrico<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0160"><span class="elsevierStyleSup">4-8</span></a>. Durante la sesión de HD hay otros factores proinflamatorios, como la membrana del dializador, las líneas, endotoxinas y otras sustancias pirogénicas, que hacen difícil valorar el papel de uno de ellos individualmente, como es el caso del acetato. Por ello, se ha recurrido a un experimento <span class="elsevierStyleItalic">in vitro</span> para dilucidar ese efecto proinflamatorio.</p><p id="par0160" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La inducción de inflamación del acetato del LD no depende solo del tipo de molécula, sino de su concentración. El acetato es una molécula fisiológica: sería su concentración entre 30 y 40 veces superior a la normal lo que provocaría la respuesta inflamatoria. Por el contrario, el citrato, aunque también está en concentraciones muy elevadas, no provoca ese efecto. Las concentraciones de una y otra molécula no son arbitrarias ni fácilmente modificables. Son las necesarias para estabilizar el LD y para contribuir al balance ácido-base adecuado durante la HD. En este estudio hemos utilizado las concentraciones habituales en el LD.</p><p id="par0165" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Como primera aproximación experimental para determinar una posible actividad diferencial de los LD sobre células inmunocompetentes, determinamos la expresión de ICAM-1 en la línea celular monocitaria THP-1. Esta línea ha sido utilizada habitualmente como modelo en estudios de daño vascular inducido asociado a la actividad inflamatoria y, más concretamente, los cambios en la expresión de ICAM-1 en estas células se han considerado un reflejo de las modificaciones que sufren las células de estirpe monocitaria para favorecer su interacción con el endotelio vascular<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0260"><span class="elsevierStyleSup">24</span></a>. Los LD con acetato incrementaron la expresión de ICAM-1 respecto a los controles, mientras que los LD con citrato no lo hicieron.</p><p id="par0170" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Dado que los LD que contienen acetato habían inducido activación en células THP-1, quisimos comprobar si este efecto era debido a alguna característica específica que mostrasen las células transformadas, por lo que decidimos cultivar PBMC de sujetos sin enfermedad previa conocida con los diferentes LD, incluyendo en este estudio otros biomarcadores asociados a activación celular que pudiesen ser de interés clínico como elementos de ayuda al diagnóstico para determinar la activación celular inducida por LD. En sangre de sujetos sanos no encontramos diferencias en cuanto a la expresión de ICAM-1 con los LD con acetato respecto al control, pero sí respecto a los LD con citrato. En el estudio de ROS se observó que los LD con acetato indujeron mayor actividad que el control y que los LD que contenían citrato. Junto a la determinación de marcadores asociados a activación celular, decidimos incluir en este estudio la determinación de microvesículas totales producidas por los PBMC, dada la relevancia señalada en los últimos años para estas estructuras en la etiopatogenia de diferentes enfermedades, incluidas las enfermedades cardiovasculares desarrolladas en un entorno de respuesta inflamatoria alterada<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0265"><span class="elsevierStyleSup">25</span></a>. Al igual que ocurría en las determinaciones de ROS, los LD con acetato indujeron un incremento de la producción de microvesículas.</p><p id="par0175" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El proceso de inflamación crónica de los pacientes con ERC se suele asociar a la presencia de células inmunocompetentes activadas en sangre periférica. En este estudio, hemos confirmado este hecho y, comparadas con las células de los sujetos control, en las de pacientes con ERC observamos mayor densidad de expresión de ICAM-1 o de niveles basales de ROS (datos no aportados).</p><p id="par0180" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Cuando comparamos la expresión de los diferentes marcadores de activación celular, a diferencia de lo observado en células de sujetos control, la expresión de ICAM-1 no se modificó con ninguno de los LD. Aunque no se ha podido determinar de forma precisa esta diferencia, una posible explicación viene asociada a la observación descrita anteriormente: al estar las células activadas, la expresión de esta molécula es tan alta que no se puede producir un aumento de su densidad de expresión ante un nuevo estímulo.</p><p id="par0185" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Se ha descrito un efecto inhibitorio directo del citrato sobre la activación de los granulocitos, contrarrestando la adherencia inducida por el leucotrieno-B4 e interfiriendo con su activación<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0270"><span class="elsevierStyleSup">26,27</span></a>. También la activación del complemento estaría reducida, incluso en concentraciones de 0,25<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L de citrato<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0205"><span class="elsevierStyleSup">13</span></a>. Estos efectos antiinflamatorios del citrato vendrían condicionados por la concentración de calcio, por lo que podrían depender de la concentración de calcio en el LD. Alguno de nuestros resultados avalan este papel beneficioso del citrato, que se añade al de la eliminación del acetato, aunque este último sería el fundamental.</p><p id="par0190" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El estudio tiene limitaciones como el pequeño número de controles sanos y la limitada información de la situación de las células de los pacientes en HD. Al comparar el efecto de los 5 grupos en las mismas células, disminuye el efecto negativo de esa limitación. La diferente composición de los LD respecto a algunos electrólitos es muy pequeña, pero no se puede excluir que tenga algún efecto.</p><p id="par0195" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Podemos concluir que el acetato en el LD, en las concentraciones que se utilizan habitualmente en la práctica clínica, aumenta el estrés oxidativo y las microvesículas totales, y puede actuar como coadyuvante de los otros estímulos proinflamatorios a los que están sometidos los pacientes urémicos en HD. Los LD con citrato no producen esta activación, por lo que podrían ser una alternativa en la clínica. El objetivo debería ser eliminar al máximo todos los elementos de la HD bioincompatibles, como lo es el acetato en estas concentraciones. Esto tendría especial interés en los pacientes mayores de 70 años en HD, generalmente metabolizadores más lentos de acetato. En estos, la eliminación del acetato en el LD podría contribuir a una mejor supervivencia independientemente de sus comorbilidades<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0280"><span class="elsevierStyleSup">28</span></a>.</p></span><span id="sec0080" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0130">Conflicto de intereses</span><p id="par0200" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los autores declaran no tener ningún conflicto de intereses.</p></span></span>" "textoCompletoSecciones" => array:1 [ "secciones" => array:10 [ 0 => array:3 [ "identificador" => "xres949516" "titulo" => "Resumen" "secciones" => array:4 [ 0 => array:1 [ "identificador" => "abst0005" ] 1 => array:2 [ "identificador" => "abst0010" "titulo" => "Material y métodos" ] 2 => array:2 [ "identificador" => "abst0015" "titulo" => "Resultados" ] 3 => array:2 [ "identificador" => "abst0020" "titulo" => "Conclusiones" ] ] ] 1 => array:2 [ "identificador" => "xpalclavsec921486" "titulo" => "Palabras clave" ] 2 => array:3 [ "identificador" => "xres949517" "titulo" => "Abstract" "secciones" => array:4 [ 0 => array:1 [ "identificador" => "abst0025" ] 1 => array:2 [ "identificador" => "abst0030" "titulo" => "Material and methods" ] 2 => array:2 [ "identificador" => "abst0035" "titulo" => "Results" ] 3 => array:2 [ "identificador" => "abst0040" "titulo" => "Conclusions" ] ] ] 3 => array:2 [ "identificador" => "xpalclavsec921487" "titulo" => "Keywords" ] 4 => array:2 [ "identificador" => "sec0005" "titulo" => "Introducción" ] 5 => array:3 [ "identificador" => "sec0010" "titulo" => "Material y métodos" "secciones" => array:8 [ 0 => array:2 [ "identificador" => "sec0015" "titulo" => "Tipos de muestras de sangre" ] 1 => array:2 [ "identificador" => "sec0020" "titulo" => "Líquidos de hemodiálisis" ] 2 => array:2 [ "identificador" => "sec0025" "titulo" => "Cultivo de monocitos humanos (THP-1)" ] 3 => array:2 [ "identificador" => "sec0030" "titulo" => "Células mononucleares de sangre periférica" ] 4 => array:2 [ "identificador" => "sec0035" "titulo" => "Determinación de moléculas de adhesión" ] 5 => array:2 [ "identificador" => "sec0040" "titulo" => "Cuantificación de los niveles de especies reactivas de oxígeno" ] 6 => array:2 [ "identificador" => "sec0045" "titulo" => "Cuantificación de microvesículas" ] 7 => array:2 [ "identificador" => "sec0050" "titulo" => "Unidades de los resultados y estadística" ] ] ] 6 => array:3 [ "identificador" => "sec0055" "titulo" => "Resultados" "secciones" => array:3 [ 0 => array:2 [ "identificador" => "sec0060" "titulo" => "Caracterización de la activación de la línea monocitaria THP-1 inducida por los diferentes líquidos de diálisis" ] 1 => array:2 [ "identificador" => "sec0065" "titulo" => "Activación de células inmunocompetentes de sujetos sanos" ] 2 => array:2 [ "identificador" => "sec0070" "titulo" => "Activación de células inmunocompetentes de sujetos con insuficiencia renal crónica" ] ] ] 7 => array:2 [ "identificador" => "sec0075" "titulo" => "Discusión" ] 8 => array:2 [ "identificador" => "sec0080" "titulo" => "Conflicto de intereses" ] 9 => array:1 [ "titulo" => "Bibliografía" ] ] ] "pdfFichero" => "main.pdf" "tienePdf" => true "fechaRecibido" => "2017-01-12" "fechaAceptado" => "2017-03-16" "PalabrasClave" => array:2 [ "es" => array:1 [ 0 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Palabras clave" "identificador" => "xpalclavsec921486" "palabras" => array:6 [ 0 => "Hemodiálisis" 1 => "Dializado" 2 => "Acetato" 3 => "Citrato" 4 => "Inflamación" 5 => "Biocompatibilidad" ] ] ] "en" => array:1 [ 0 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Keywords" "identificador" => "xpalclavsec921487" "palabras" => array:6 [ 0 => "Haemodialysis" 1 => "Dialysate" 2 => "Acetate" 3 => "Citrate" 4 => "Inflammation" 5 => "Biocompatibility" ] ] ] ] "tieneResumen" => true "resumen" => array:2 [ "es" => array:3 [ "titulo" => "Resumen" "resumen" => "<span id="abst0005" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><p id="spar0005" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">El líquido de diálisis con citrato no induce <span class="elsevierStyleItalic">in vitro</span> estrés oxidativo ni inflamación en comparación con el acetato.</p><p id="spar0010" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">El incremento de la acetatemia durante la sesión de hemodiálisis se ha asociado a una serie de alteraciones: aumento del estrés oxidativo, de las citocinas proinflamatorias y de la síntesis de óxido nítrico. El ácido cítrico puede jugar un papel alternativo al acetato como estabilizante del líquido de diálisis (LD). El citrato en comparación con el acetato tiene un patrón diferente en cuanto a la activación leucocitaria y del complemento. El objetivo de este estudio es comparar el acetato con el citrato en el LD respecto a su efecto inflamatorio en las células inmunocompetentes de la sangre.</p></span> <span id="abst0010" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0010">Material y métodos</span><p id="spar0015" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">El efecto del acetato o citrato fue investigado en sangre completa de pacientes urémicos y controles sanos <span class="elsevierStyleItalic">in vitro</span>, enfrentada a 4<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>tipos de LD: el LD 1, con 1<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L de citrato y libre de acetato; LD 2, con 0,8<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L de citrato y 0,3<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L de acetato; LD 3, con 3<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L de acetato sin citrato y LD 4, con 4<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L de acetato sin citrato. Los tipos de células utilizados fueron: cultivo de monocitos humanos (THP-1); células mononucleares de sangre periférica (PBMC) de controles sanos y pacientes urémicos en HD. Se determinó ICAM-1, la cuantificación de los niveles de especies reactivas de oxígeno (ROS) y la cuantificación de microvesículas totales.</p></span> <span id="abst0015" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0015">Resultados</span><p id="spar0020" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Los LD con acetato (L3 y L4) indujeron un incremento en la densidad de expresión de ICAM-1 en las células THP-1, no así los de citrato; con células inmunocompetentes de sujetos sanos los LD con acetato (L3 y L4) respecto a los con citrato (L1 y L2) observamos un incremento en la expresión de ICAM-1; con células de pacientes en hemodiálisis no existían diferencias significativas entre los diferentes LD. Tanto en las células de sujetos sanos como en las de los dializados, se incrementaron significativamente la expresión de especies reactivas de oxígeno y las microvesículas con los LD con acetato y no con citrato.</p></span> <span id="abst0020" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0020">Conclusiones</span><p id="spar0025" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">El acetato en el LD, en las concentraciones que se utilizan habitualmente en la práctica clínica, aumenta el estrés oxidativo y las microvesículas totales, y puede actuar como coadyuvante de los otros estímulos proinflamatorios a los que están sometidos los pacientes urémicos en hemodiálisis. Los LD con citrato no producen esta activación, por lo que podrían ser una alternativa en la clínica.</p></span>" "secciones" => array:4 [ 0 => array:1 [ "identificador" => "abst0005" ] 1 => array:2 [ "identificador" => "abst0010" "titulo" => "Material y métodos" ] 2 => array:2 [ "identificador" => "abst0015" "titulo" => "Resultados" ] 3 => array:2 [ "identificador" => "abst0020" "titulo" => "Conclusiones" ] ] ] "en" => array:3 [ "titulo" => "Abstract" "resumen" => "<span id="abst0025" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><p id="spar0030" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Increased acetataemia during haemodialysis sessions has been associated with a number of abnormalities, including increased oxidative stress, pro-inflammatory cytokines and nitric oxide synthesis. However, citric acid may play an alternative role to acetate as a dialysate stabiliser given that the effect of citrate on complement and leukocyte activation is different to that of acetate. The purpose of this study was to compare the inflammatory effect in immunocompetent blood cells of acetate dialysate and citrate dialysate.</p></span> <span id="abst0030" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0030">Material and methods</span><p id="spar0035" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">The effect of acetate and/or citrate was investigated in the whole blood of uraemic patients and in healthy in vitro samples. Four types of dialysate were tested: dialysate 1, acetate-free with 1<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L of citrate; dialysate 2, with 0.8<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L of citrate and 0.3<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L of acetate; dialysate 3, citrate-free with 3<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L of acetate; and dialysate 4, citrate-free with 4<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mmol/L of acetate. The cell types used were: human monocyte culture (THP-1); and peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) from healthy subjects and uraemic patients on haemodialysis. ICAM-1 was determined and levels of reactive oxygen species and total microvesicles were quantified.</p></span> <span id="abst0035" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0035">Results</span><p id="spar0040" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Unlike the citrate dialysates, the dialysates with acetate (dialysate 3 and dialysate 4) induced increased ICAM-1 expression density in THP-1 cells; an increase in ICAM-1 expression was observed in the immunocompetent cells of healthy subjects with acetate dialysate (dialysate 3 and dialysate 4) but not with citrate dialysate (dialysate 1 and dialysate 2). No significant ICAM-1 differences were found between the different dialysates in the cells of haemodialysed patients. Reactive oxygen species expression and the number of microvesicles increased significantly with acetate dialysate but not with citrate dialysate in the cells of both healthy subjects and haemodialysed patients.</p></span> <span id="abst0040" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0040">Conclusions</span><p id="spar0045" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">At the concentrations in which it is generally used in clinical practice, acetate-based dialysate increases oxidative stress and the total number of microvesicles and may induce other pro-inflammatory stimuli typical of uraemic patients on haemodialysis. Citrate dialysates do not induce this activation, which could make them a suitable alternative in clinical practice.</p></span>" "secciones" => array:4 [ 0 => array:1 [ "identificador" => "abst0025" ] 1 => array:2 [ "identificador" => "abst0030" "titulo" => "Material and methods" ] 2 => array:2 [ "identificador" => "abst0035" "titulo" => "Results" ] 3 => array:2 [ "identificador" => "abst0040" "titulo" => "Conclusions" ] ] ] ] "multimedia" => array:5 [ 0 => array:7 [ "identificador" => "fig0005" "etiqueta" => "Figura 1" "tipo" => "MULTIMEDIAFIGURA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "figura" => array:1 [ 0 => array:4 [ "imagen" => "gr1.jpeg" "Alto" => 1407 "Ancho" => 1656 "Tamanyo" => 62151 ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "<p id="spar0050" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">THP-1 ICAM. En esta figura se muestran las diferencias (media<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>±<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>DE) en la expresión de ICAM-1 en la línea celular monocitaria THP1 cultivada en solución isotónica control o con los diferentes líquidos de hemodiálisis. Las células THP-1 que se cultivaron con líquidos que contenían acetato mostraron un incremento significativo en el canal medio de fluorescencia respecto al control y a las células tratadas con líquidos con citrato.</p> <p id="spar0055" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">CMF: canal medio de fluorescencia.</p> <p id="spar0060" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">*p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span><<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,05.</p>" ] ] 1 => array:7 [ "identificador" => "fig0010" "etiqueta" => "Figura 2" "tipo" => "MULTIMEDIAFIGURA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "figura" => array:1 [ 0 => array:4 [ "imagen" => "gr2.jpeg" "Alto" => 1454 "Ancho" => 1650 "Tamanyo" => 74073 ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "<p id="spar0065" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">ICAM-1 y ROS en células de sujetos sanos.</p> <p id="spar0070" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">En esta figura se muestran las diferencias observadas (media<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>±<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>DE) en la expresión de ICAM-1 y en la actividad ROS en células inmunocompetentes de sangre periférica de sujetos sin enfermedad renal conocida cultivadas en solución isotónica control o con los diferentes líquidos de hemodiálisis. Respecto al control, no se observaron diferencias en la expresión de ICAM-1; sin embargo, al comparar entre los diferentes líquidos, los que contenían acetato indujeron un incremento significativo de esta molécula (*p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span><<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,05). Respecto a la expresión de ROS, cuando las células se cultivaron con líquidos que contenían acetato, se observaron diferencias significativas con relación al control y con respecto a las células tratadas con líquidos con citrato (*p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span><<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,05).</p>" ] ] 2 => array:7 [ "identificador" => "fig0015" "etiqueta" => "Figura 3" "tipo" => "MULTIMEDIAFIGURA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "figura" => array:1 [ 0 => array:4 [ "imagen" => "gr3.jpeg" "Alto" => 1897 "Ancho" => 2866 "Tamanyo" => 277958 ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "<p id="spar0075" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Microvesículas circulantes.</p> <p id="spar0080" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">A) Histogramas representativos de la distribución de microvesículas producidas por células de sujetos sanos con líquidos con citrato (imágenes superiores), y con líquidos con acetato (figuras inferiores). B) Cuantificación del incremento de microvesículas (media<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>±<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>DE) en células inmunocompetentes de sangre periférica de sujetos control en cultivo con líquidos con acetato, que se incrementaron de manera significativa respecto al control y a las células tratadas con líquidos con citrato (*p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span><<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,01). C) Cuantificación del incremento de las microvesículas producidas por célula inmunocompetentes de enfermos con enfermedad renal crónica en tratamiento de hemodiálisis en respuesta a los diferentes líquidos de hemodiálisis Los líquidos con acetato produjeron un incremento significativo de microvesículas en comparación con control o con líquidos con citrato (p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span><<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,05).</p>" ] ] 3 => array:7 [ "identificador" => "fig0020" "etiqueta" => "Figura 4" "tipo" => "MULTIMEDIAFIGURA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "figura" => array:1 [ 0 => array:4 [ "imagen" => "gr4.jpeg" "Alto" => 1397 "Ancho" => 1647 "Tamanyo" => 71506 ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "<p id="spar0085" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">ICAM-1 y ROS en células de pacientes en hemodiálisis.</p> <p id="spar0090" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Análisis comparativo (media<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>±<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>DE) de la expresión de ICAM-1 y ROS en células inmunocompetentes de sangre periférica de enfermos con enfermedad renal crónica en tratamiento de hemodiálisis. No se observaron diferencias en la expresión de ICAM-1 entre las diferentes muestras. Con relación a la expresión de ROS, cuando las células se cultivaron con líquidos con acetato se observaron diferencias significativas respecto al control y a las células tratadas con líquidos cont citrato (*p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span><<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,05).</p>" ] ] 4 => array:8 [ "identificador" => "tbl0005" "etiqueta" => "Tabla 1" "tipo" => "MULTIMEDIATABLA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "detalles" => array:1 [ 0 => array:3 [ "identificador" => "at1" "detalle" => "Tabla " "rol" => "short" ] ] "tabla" => array:1 [ "tablatextoimagen" => array:1 [ 0 => array:2 [ "tabla" => array:1 [ 0 => """ <table border="0" frame="\n \t\t\t\t\tvoid\n \t\t\t\t" class=""><thead title="thead"><tr title="table-row"><th class="td" title="table-head " align="left" valign="top" scope="col" style="border-bottom: 2px solid black">Fórmula \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th><th class="td" title="table-head " align="left" valign="top" scope="col" style="border-bottom: 2px solid black">Referencia \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th><th class="td" title="table-head " align="left" valign="top" scope="col" style="border-bottom: 2px solid black">Na \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th><th class="td" title="table-head " align="left" valign="top" scope="col" style="border-bottom: 2px solid black">Ca \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th><th class="td" title="table-head " align="left" valign="top" scope="col" style="border-bottom: 2px solid black">Mg \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th><th class="td" title="table-head " align="left" valign="top" scope="col" style="border-bottom: 2px solid black">K \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th><th class="td" title="table-head " align="left" valign="top" scope="col" style="border-bottom: 2px solid black">Cl \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th><th class="td" title="table-head " align="left" valign="top" scope="col" style="border-bottom: 2px solid black">Citrato \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th><th class="td" title="table-head " align="left" valign="top" scope="col" style="border-bottom: 2px solid black">Acetato \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th><th class="td" title="table-head " align="left" valign="top" scope="col" style="border-bottom: 2px solid black">Bicarbonato \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th><th class="td" title="table-head " align="left" valign="top" scope="col" style="border-bottom: 2px solid black">Glucosa \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th><th class="td" title="table-head " align="left" valign="top" scope="col" style="border-bottom: 2px solid black">Osmolaridad \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th></tr></thead><tbody title="tbody"><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " align="" valign="top"> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="" valign="top"> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">mM/L \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">mM/L \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">mM/L \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="" valign="top"> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">mM/L \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">mM/L \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">mM/L \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">mM/L \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">mM/L \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">mOsm/L \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td-with-role" title="table-entry ; entry_with_role_rowhead " align="left" valign="top">LD1 Citrato Gambro® \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">CX 265 G \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">140 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">1,65 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">0,5 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">2 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">109,3 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">1 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">34 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">8,33 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="" valign="top"> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td-with-role" title="table-entry ; 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2024 Noviembre | 5 | 6 | 11 |
2024 Octubre | 99 | 39 | 138 |
2024 Septiembre | 103 | 22 | 125 |
2024 Agosto | 117 | 63 | 180 |
2024 Julio | 125 | 26 | 151 |
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2024 Mayo | 135 | 33 | 168 |
2024 Abril | 106 | 39 | 145 |
2024 Marzo | 132 | 26 | 158 |
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2021 Noviembre | 189 | 55 | 244 |
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2021 Septiembre | 68 | 50 | 118 |
2021 Agosto | 75 | 50 | 125 |
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2021 Junio | 68 | 34 | 102 |
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2021 Marzo | 94 | 61 | 155 |
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2021 Enero | 60 | 37 | 97 |
2020 Diciembre | 59 | 30 | 89 |
2020 Noviembre | 78 | 33 | 111 |
2020 Octubre | 74 | 54 | 128 |
2020 Septiembre | 123 | 37 | 160 |
2020 Agosto | 59 | 34 | 93 |
2020 Julio | 99 | 30 | 129 |
2020 Junio | 82 | 30 | 112 |
2020 Mayo | 132 | 24 | 156 |
2020 Abril | 115 | 24 | 139 |
2020 Marzo | 68 | 30 | 98 |
2020 Febrero | 109 | 41 | 150 |
2020 Enero | 122 | 44 | 166 |
2019 Diciembre | 96 | 24 | 120 |
2019 Noviembre | 213 | 39 | 252 |
2019 Octubre | 210 | 41 | 251 |
2019 Septiembre | 226 | 28 | 254 |
2019 Agosto | 124 | 37 | 161 |
2019 Julio | 113 | 18 | 131 |
2019 Junio | 96 | 41 | 137 |
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2019 Marzo | 100 | 43 | 143 |
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2019 Enero | 54 | 26 | 80 |
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2018 Noviembre | 287 | 22 | 309 |
2018 Octubre | 194 | 19 | 213 |
2018 Septiembre | 90 | 15 | 105 |
2018 Agosto | 71 | 26 | 97 |
2018 Julio | 57 | 17 | 74 |
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2018 Mayo | 87 | 14 | 101 |
2018 Abril | 84 | 13 | 97 |
2018 Marzo | 70 | 11 | 81 |
2018 Febrero | 65 | 6 | 71 |
2018 Enero | 56 | 12 | 68 |
2017 Diciembre | 106 | 13 | 119 |
2017 Noviembre | 158 | 17 | 175 |